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第六章 细胞融合 (Cell fusion)
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6.1 概述 细胞融合(cell fusion)又称体细胞杂交(somatic
6.1 概述 细胞融合(cell fusion)又称体细胞杂交(somatic hybrydization)或细胞杂交(cell hybrydization ): 在离体条件下用人工方法将不同种或同种不同类型 的单细胞通过无形方式融合成一个杂合细胞,生产 特殊生物制品、分化再生新物种或新品种的技术。 细胞融合技术的出现标志着细胞工程的诞生。 目前被广泛地应用于单克隆抗体、生物的远缘杂 交、新品种的培育和人类基因图工作(小鼠和人类 细胞融合)。
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6.1 概述 体细胞间的融合现象:Muller(1838)发现脊椎 动物肿瘤细胞的多核现象。其后发现骨髓、肺组织
6.1 概述 受精:雌雄生殖细胞间的自然融合。 体细胞间的融合现象:Muller(1838)发现脊椎 动物肿瘤细胞的多核现象。其后发现骨髓、肺组织 和各种正常组织及炎症和坏死部位的多核现象。 实验体细胞融合:在细胞培养技术之后。首先 (Lambert)发现体外培养的肿瘤细胞自发融合。 后(Okata,1962)发现仙台病毒可诱发艾氏腹水瘤 细胞融合,开创了动物细胞融合的崭新领域。其后 不同动物细胞、植物和微生物原生质体融合技术也 相继发展起来。
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6.1.1 细胞融合的意义 细胞融合(cell fusion):将不同来源的原生质体(动 物细胞)相融合,使之分化再生、形成杂合细胞、新
细胞融合的意义 细胞融合(cell fusion):将不同来源的原生质体(动 物细胞)相融合,使之分化再生、形成杂合细胞、新 物种或新品种的技术。 意义:可应用于优先选择改良、克服远缘杂交中的 不亲和障碍、更加广泛地组合起各种植物的优良遗传 性状,从而培养出理想的品种。可以避开生殖细胞的 受精过程,从而在亲缘关系更远的物种间实现基因转 移,创造出自然界中所没有的新物种或杂合细胞。还 可创造细胞质杂种。
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6.1.2 细胞融合的原理和融合材料 1、 细胞融合的基本原理:不同的原生质体或细胞→融合细 胞→新生物(或杂合细胞)。
细胞融合的原理和融合材料 1、 细胞融合的基本原理:不同的原生质体或细胞→融合细 胞→新生物(或杂合细胞)。 两种不同植物的体细胞经纤维素酶、果胶酶消化,除去细胞 壁,得到原生质体(或动物细胞),通过化学或物理方法诱导 其细胞融合形成杂种细胞;以适当的技术进行杂种细胞的分拣 和培养,促使杂种细胞分裂形成细胞团、愈伤组织、直到分化 发育成杂种植株,实现基因在远缘物种间的转移。 2、融合材料 (1) 植物或微生物原生质体的制备 (2) 动物单个细胞的获得 获得步骤: (1) 组织的获得、(2) 组织的消化、(3)原生质体或动 物单细胞的分离。
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6.1.3 原生质体的制备与培养 6.1.3.1 原生质体的制备 1.原生质体来源:植物的叶片、根尖、花粉等。
原生质体的制备与培养 原生质体的制备 1.原生质体来源:植物的叶片、根尖、花粉等。 2. 制备原生质体:机械法;酶解法 酶解法:(1) 取材消毒 (2) 酶解制备 (3) 原生质体收集 3. 原生质体的纯化方法 过滤-离心法; 漂浮法; 沉降法和漂浮法结合
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6.1.3 原生质体的制备与培养 6.1.3.2 原生质体培养方法: (1)液体培养法:将纯化后的原生质体悬浮于 液体培养基中培养。
原生质体的制备与培养 原生质体培养方法: (1)液体培养法:将纯化后的原生质体悬浮于 液体培养基中培养。 (2) 固体平板法:固体培养基上培养。类似植 物单细胞培养法 (3)双层培养法:在琼脂培养基上部加入一薄 层液体原生质体培养液培养原生质体
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6.1.4 动物单个细胞的获得 动物单细胞的获得: 1、组织的获得:处死动物取出组织块,放入小烧杯
动物单个细胞的获得 动物单细胞的获得: 1、组织的获得:处死动物取出组织块,放入小烧杯 中,组织块剪碎1mm3大小加入Hanks溶液,低速离 心,留下组织块。 2、组织的消化:胰蛋白酶消化: ①向组织块中加入30~50倍体积的胰蛋白酶液。 ②37℃水浴内消化,每5~10分钟摇一次。 ③Hanks漂洗两次。 ④800r/min离心5min,弃上液,加入营养液。
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6.2 细胞融合技术与融合细胞的选择 细胞融合技术主要有: 生物法——仙台病毒法 化学法——PEG结合高Ga2+、pH诱导法
6.2 细胞融合技术与融合细胞的选择 细胞融合技术主要有: 生物法——仙台病毒法 化学法——PEG结合高Ga2+、pH诱导法 物理法——电融合诱导法 融合细胞的选择: 融合细胞的类型:同核体;异核体;多核体。 常用的选择方法:遗传互补筛选法;抗性互补筛选 法;生长特性筛选法;物理特性筛选法;其他方法
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6.2.1 生物法——仙台病毒法 灭活的仙台病毒(HVJ)可促使细胞凝结、使 细胞发生融合(HVJ与细胞膜的受体结合):
生物法——仙台病毒法 灭活的仙台病毒(HVJ)可促使细胞凝结、使 细胞发生融合(HVJ与细胞膜的受体结合): 1.两个原生质体或细胞在病毒黏结作用下彼此靠近 2.通过病毒与原生质体或细胞膜的作用使两个细胞 膜间相互渗透,胞质互相渗透。 3.两个原生质体的细胞核相互融合,融为一体。 4.进入正常的细胞分裂途径,分裂成含有两种染色 体的杂种子细胞。
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PEG法诱导原生质体的机制尚不十分清楚,初步分
化学法—PEG结合高Ga2+、pH诱导 PEG法诱导原生质体的机制尚不十分清楚,初步分 析可能是由于带有大量负电荷的PEG分子和原生质体 表面的负电荷间在钙离子的连接下形成静电键,促使 异源的原生质体间的黏着而结合。用高钙离子和pH 溶液将与质膜结合的PEG分子进行洗脱,导致电荷平 衡失调并重新分配,使两种原生质体上的正负电荷连 接起来,进而形成具有共同质膜的融合体。
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6.2.2 化学法—PEG结合高Ga2+、pH诱导 1. 做好两种原生质体的识别标记,如色素、缺陷型抗 性等。
1. 做好两种原生质体的识别标记,如色素、缺陷型抗 性等。 2. 两种原生质体(密度105个∕ml)按1:1等量混合。 3.PEG的分子量为4000~6000,加热融化与Eagle溶液配 成50%。加入PEG后,24℃培育10~20min,缓缓加入高 pH、高钙离子液,15分钟后冲洗液冲洗,离心收集原生质 体。 4.计算融合率 融合率=(融合细胞的细胞核总数/视野内全部细胞的 细胞核总数)×100%
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6.2.3 物理法——电融合诱导法 是20世纪80年代出现的细胞融合技术。在直流电脉 冲的诱导下,原生质体膜表面的电荷和氧化还原电位
物理法——电融合诱导法 是20世纪80年代出现的细胞融合技术。在直流电脉 冲的诱导下,原生质体膜表面的电荷和氧化还原电位 发生改变,使异种原生质体黏合并发生质膜瞬间破 裂,进而质膜开始连接,直到闭和成完整的膜形成融 合体。 优点:融合率高、重复性好、对原生质体伤害 小、装置精巧、方法简便、可在显微镜下观察或录象 融合过程、诱导过程可控性强等。
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在交流电场中原生质体排列成念珠状、发生融合
A 平行多电极融 合装置示意图 B 电融合微室示意图 上:俯视图 :下侧面图 电融合设备及原理图
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6.2.3 物理法——电融合诱导法 电融合诱导法: 1. 亲本原生质体均匀混合放入融合小室,微电极只有一个小
物理法——电融合诱导法 电融合诱导法: 1. 亲本原生质体均匀混合放入融合小室,微电极只有一个小 室,平行电极型有4个小室,两电极间隔3㎜,整个装置放在 一个培养皿中。 2. 微电极型的两个电极的端部同时与两个靠近的原生质体膜 表面接触,5~12mA脉冲电流刺激1~5mS,原生质体在累计几秒 到几十秒时间内暂时收缩,两膜间形成小孔,连接成桥,经 点到面完成连接,最后形成融合体。 3. 经平行电极的1兆赫交流双向脉冲,原生质体极化产生偶极 子,紧密排列成串珠状。在适当时间和强度的直流电(如50 mA,1.2~2kV∕㎝)脉冲作用下,击穿质膜,成融合体。
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6.2.4 细胞融合的影响因素 植物细胞融合效率与外界条件有关: (1)PEG诱导融合:关键是作用时间。尤其是高钙离子和pH 溶液处理时间。
细胞融合的影响因素 植物细胞融合效率与外界条件有关: (1)PEG诱导融合:关键是作用时间。尤其是高钙离子和pH 溶液处理时间。 (2)PEG规格和纯度与融合效率有关。 (3)电场诱导融合:融合率与原生质体密度有关。(最适 2×104~8×104) (4)融合液中加少量氯化钙,可维持一定电导率,对细胞有 保护作用;电流强弱、处理时间、电脉冲大小会影响融合率。 (5)在促融剂中添加刀豆蛋白、胰蛋白酶、精胺、亚精胺 等可提高融合效率。
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6.2.5 动物细胞融合 动物细胞融合过程中,促融剂、细胞性质、温度、pH、 离子强度、离子种类等影响融合效率。
动物细胞融合 动物细胞融合过程中,促融剂、细胞性质、温度、pH、 离子强度、离子种类等影响融合效率。 (1)亲本细胞表面性质影响较大。表面覆盖绒毛,不规则 者易融合,光滑者不易融合。 (2)细胞种类不同,融合效果不同。如腹水癌及株化细胞 易融合,淋巴和血细胞几乎不融合。 (3)细胞融合时需要适宜温度和运动(震摇)状态。 (4)细胞融合过程中,通常耗氧量较大,缺氧时经常不融 合。有些细胞在无氧下也可融合。 (5)有些细胞融合时需要钙离子,否则不融合,细胞蛋白 质也发生变化。 (6)最适pH为7.4~7.8之间。此范围外,融合率较低。
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6.2.6 融合细胞的筛选 1、融合细胞的类型: (1)同核体——同缘原生质体的融合体。 (2)异核体——非同缘原生质体的融合体。
融合细胞的筛选 1、融合细胞的类型: (1)同核体——同缘原生质体的融合体。 (2)异核体——非同缘原生质体的融合体。 (3)多核体——含双亲不同比例核物质的融合体。 2、筛选融合细胞的常用方法: (1)遗传互补筛选法:利用每一亲本贡献一个功能 正常等位基因,纠正另外一个亲本的缺陷,从而令杂 种细胞表现正常功能的原理选择杂种细胞。 (2)抗性互补筛选法:利用亲本原生质体对抗生素 和除草剂及其他毒性物质抗性差异来选择细胞。抗性 突变体或抗性有差异者可用此法。
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6.2.6 融合细胞的筛选 2、筛选融合细胞的常用方法: (3)生长特性筛选法:利用原生质体对培养基成分
融合细胞的筛选 2、筛选融合细胞的常用方法: (3)生长特性筛选法:利用原生质体对培养基成分 要求与反应的差异选择杂种细胞。如外源激素。 (4)物理特性筛选法:亲本原生质体大小、颜色、 漂浮密度及电脉差异率等差异选择杂种细胞。 (5)其他方法:显微操作技术也能把单个异核体分 离出来。双亲融合,则具有与双亲不同的荧光标记。 采用无毒荧光素标记双亲原生质体,融合后利用电子 荧光激活选择器自动分类和选择融合细胞。
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现代植物细胞融合技术研究是从20世纪六十年 6.3 细胞融合技术的应用举例 代才开始的。1972年美国科学家卡尔逊开发出杂种
6.3 细胞融合技术的应用举例 现代植物细胞融合技术研究是从20世纪六十年 代才开始的。1972年美国科学家卡尔逊开发出杂种 烟草;1978年德国科学家梅歇尔斯首次将番茄与马 铃薯细胞融合成功,预示着地上结西红柿、地下结 土豆的新植物的可能。 1978年瑞士科学家埃勒门和美国的柯路斯将人 体的纤维肉瘤细胞与小鼠的畸胎瘤细胞融合后培育 成含人体染色体的人造小鼠。近年,科学家利用以 细胞融合为核心技术的操作取得了很大科研成果。
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6.3.1 动物细胞融合——单克隆抗体 英国科学家科莱尔和米尔斯坦(1975)合作 将适应于体外培养的小鼠骨髓瘤细胞与绵羊红细
动物细胞融合——单克隆抗体 英国科学家科莱尔和米尔斯坦(1975)合作 将适应于体外培养的小鼠骨髓瘤细胞与绵羊红细 胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,发现融合的杂交 瘤细胞具有双亲细胞特征,通过克隆化可使杂交 细胞成为单纯的细胞系。由此单克隆系可以获得 结构与各种特性完全相同的高纯度抗体,即单克 隆抗体。 动物细胞融合最具价值的成就是利用杂交瘤 技术生产单克隆抗体。
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Burnet(1957)提出克隆选择理论:一种浆细胞只产
杂交瘤技术的基本原理 Burnet(1957)提出克隆选择理论:一种浆细胞只产 生一种类型的免疫球蛋白分子,那么,从一个单克隆 细胞产生的抗体分子就是单克隆的,且该单克隆抗体 具有独特的均一结构。此假定经各种实验得以证实。 将瘤细胞与B细胞融合,培养成既能产生单一抗 体,又能在体外快速生长的杂交瘤细胞。该杂交瘤细 胞群经单克隆化,持续分泌成分单一的特异性抗体, 称为单克隆抗体(monoclonal antibody,MCAB)。 骨髓瘤细胞与淋巴细胞融合的混合物中有三种细 胞:没融合的两种细胞与杂交瘤细胞。
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6.3.1 .1 杂交瘤技术的基本原理 1、亲本细胞的选择 (1)骨髓瘤细胞:骨髓瘤细胞本身不分泌抗体(保
杂交瘤技术的基本原理 1、亲本细胞的选择 (1)骨髓瘤细胞:骨髓瘤细胞本身不分泌抗体(保 障杂交瘤细胞产生单抗);有无限分裂的能力;黄嘌 呤、鸟嘌呤转磷酸核糖激酶缺陷型(HGPRT-)或胸 腺嘧啶核苷激酶缺陷型(TK-)——在HAT培养基中 不能生存增殖。 (2)B淋巴细胞:经特定抗原免疫能产生目的抗体 的淋巴细胞,且被免疫动物种系与骨髓瘤细胞一致或 相近亲缘关系。
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6.3.1 .1 杂交瘤技术的基本原理 2、培养基的选择(HAT培养基): 为去除未融合的骨髓瘤细胞,在培养液中加次黄嘌呤
杂交瘤技术的基本原理 2、培养基的选择(HAT培养基): 为去除未融合的骨髓瘤细胞,在培养液中加次黄嘌呤 (H)、氨基喋呤(A)及胸腺嘧啶脱氧核苷(T)。A 阻断正常细胞DNA合成主路途径(二氢叶酸到四氢叶 酸),故只有能利用H和T的正常细胞从旁路合成DNA 才不死亡(脾脏细胞有最高分裂次数或不分裂, 死亡) 骨髓瘤细胞:( HGPRT-和TK-)无法利用旁路合成 DNA,主路又被A阻断,故单纯的瘤细胞不久即死亡。 杂交瘤细胞:具有瘤细胞(无限分裂的能力)特性和 野生型淋巴细胞 ( HGPRT+和TK+)旁路合成DAN的特 性,长期生存,从而被分离出来。
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6.3.2 杂交瘤技术的过程 1、融合细胞的制备: (1)脾淋巴细胞: 1)经免疫的小鼠放血致死,无菌操作取脾脏, 去胞膜;
杂交瘤技术的过程 1、融合细胞的制备: (1)脾淋巴细胞: 1)经免疫的小鼠放血致死,无菌操作取脾脏, 去胞膜; 2)用RPMI-1640或DMEM培养液清洗,放在盛 10毫升培养平皿的双层铜丝网上; 3)用注射器内玻璃管芯将脾淋巴细胞轻轻挤压 到培养液中; 4)计数后将细胞液装入加盖离心管内,置于冰 箱备用。
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6.3.2 杂交瘤技术过程 1、融合细胞的制备 (2)骨髓瘤细胞: 1)选择形态好的骨髓瘤细胞,加0.2%台盼蓝染
杂交瘤技术过程 1、融合细胞的制备 (2)骨髓瘤细胞: 1)选择形态好的骨髓瘤细胞,加0.2%台盼蓝染 液,计数(活细胞80%以上); 2)1500r/min离心,弃上清液,加20ml培养液清 洗后再次离心。(可用于杂交融合)
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6.3 .2 杂交瘤技术过程 2、细胞杂交融合: 1)按4:1~10:1的比例将脾细胞与骨髓瘤细胞混匀于同 一离心管中;
杂交瘤技术过程 2、细胞杂交融合: 1)按4:1~10:1的比例将脾细胞与骨髓瘤细胞混匀于同 一离心管中; 2)离心,弃上清液,置于37℃水浴,摇动离心管逐 滴加入1 mlpH7.2~7.6的50%PEG4000,1分钟内完成, 水浴中继续摇动1~2分钟; 3)沿管壁逐滴加入10ml培养液,混均稀释PEG,终 止诱导作用; 4)1000r/min迅速离心1分钟,弃去上清液。
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6.3.2 杂交瘤技术过程 3、分装培养: (1)离心后的混合细胞中加HAT培养液,使浓度 为:2×105个细胞∕0.1ml培养液;
杂交瘤技术过程 3、分装培养: (1)离心后的混合细胞中加HAT培养液,使浓度 为:2×105个细胞∕0.1ml培养液; (2)96孔培养板中每孔加0.1ml细胞稀释培养液, 加盖密封,5%CO2培养箱37℃培养; (3)次日检查有无污染,若正常,换液——毛细 管吸出半量培养液,补充0.2mlHAT培养液,以后隔 日一换; (4)二周后改HT培养液,3~5次后改D-15液 (5)培养5~6天有杂交瘤细胞克隆出现,未融合的 脾细胞和骨髓瘤细胞5~7天后逐渐死亡。
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6.3.2 杂交瘤技术过程 4、抗体检测 (1)抗原结合法:放射元素125I标记的抗原与杂交瘤
杂交瘤技术过程 4、抗体检测 (1)抗原结合法:放射元素125I标记的抗原与杂交瘤 培养上清液于37℃下温育,活性碳吸附,加PEG6000 与琼脂糖凝胶珠连接,使免疫复合物与其他抗原分 开。根据免疫复合物中放射级别可计算出抗体数量。 (2)第二抗体法:以杂交瘤细胞产生的抗体为抗原 的第二抗体用125I标记,再与酶连接或荧光染料连接, 以检测出杂交瘤抗体。
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6.3.2 杂交瘤技术过程 5、杂交瘤细胞的克隆 一种抗原有多个抗原决定簇,故杂交瘤细胞会产生 许多种单克隆抗体。
杂交瘤技术过程 5、杂交瘤细胞的克隆 一种抗原有多个抗原决定簇,故杂交瘤细胞会产生 许多种单克隆抗体。 (1)有限稀释法:检测到有抗体后,杂交瘤细胞长 满小孔的1/3~1/2时,用含20%的BSA的HAT培养液将 其稀释成5个细胞/0.2ml和1个细胞/0.2ml两种浓度,另 外重新接种,每孔0.2ml,5%CO2培养箱37℃培养, 检查抗体。 一般应作三次有限稀释培养,2周左右,才能得到 稳定的单抗细胞株。
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6.3.2 杂交瘤技术的过程 5、杂交瘤细胞的克隆 (2)软琼脂法:配制含0.5%琼脂的上述HAT培
杂交瘤技术的过程 5、杂交瘤细胞的克隆 (2)软琼脂法:配制含0.5%琼脂的上述HAT培 养液,用1~5个细胞/0.2ml的细胞液在培养皿中接 种,5%CO2培养箱,37℃培养。此法较容易获得 单个的细胞克隆
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6.3.3 单克隆抗体的规模化生产 现在生物技术公司一般采用生物反应器悬浮 培养的方法生产单克隆抗体。
单克隆抗体的规模化生产 现在生物技术公司一般采用生物反应器悬浮 培养的方法生产单克隆抗体。 不同的方法生产单克隆抗体的纯度不同。在 生物医学领域中应用的单克隆抗体必须要求一定 的纯度。 培养过程中,加入培养液的胎牛血清蛋白 (BSA)完全血清由于其成分复杂而给提纯工作 带来难度。目前,很多研究人员都在开发研究无 血清培养基替代动物血清。
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6.4 单克隆抗体技术
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6.4.1 单克隆抗体技术的原理 1. HAT选择原理 利用HAT选择性培养液和突变细胞株解决了分离杂 交瘤细胞的困难。
单克隆抗体技术的原理 1. HAT选择原理 利用HAT选择性培养液和突变细胞株解决了分离杂 交瘤细胞的困难。 2. 骨髓瘤细胞和淋巴细胞 亲本骨髓瘤细胞不分泌任何抗体或免疫球蛋白,否 则将影响单克隆抗体的产生。为代谢缺陷型,可被 HAT选择性培养液淘汰。淋巴(B)细胞分泌抗体, 野生型。 3. 杂交瘤细胞? 4. 杂交瘤细胞单克隆化?5. 单克隆 抗体?
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6.4.2 单克隆抗体技术过程 1、细胞培养材料的准备:培养基;血清;抗生素。 2、免疫动物:
单克隆抗体技术过程 1、细胞培养材料的准备:培养基;血清;抗生素。 2、免疫动物: ①动物选择:小鼠(纯系8周龄的BALB∕C);Lou大 鼠;人细胞。 ②抗原与载体: 抗原:可溶性抗原:蛋白质、核酸、多肽、多糖(加 免疫佐剂,提高免疫效果);颗粒性抗原:病毒、细 菌、真菌、细胞(抗原性较强,不加免疫佐剂) 。 载体:固定和缓慢释放抗原的惰性、无毒的物质(膜 体和珠体)。可溶性抗原固定在载体上成为颗粒性抗 原,被吞噬细胞吞噬和提呈,具较好的抗原性。 ③免疫途径:腹腔、皮下;加强——尾静脉。
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6.4.2 单克隆抗体技术过程 3、亲本细胞的准备 ①脾细胞分离 ②小鼠骨髓瘤细胞 4、细胞融合 ① 细胞融合剂和融合手段:
单克隆抗体技术过程 3、亲本细胞的准备 ①脾细胞分离 ②小鼠骨髓瘤细胞 4、细胞融合 ① 细胞融合剂和融合手段: 病毒融合剂;化学融合剂;电融合技术。 ②融合技术:促融剂及浓度、细胞浓度与比例、温 度等。 ③提高融合频率的途径:秋水仙素预处理瘤细胞、 PEG和DMSO协同促融、饲养层、条件培养液 (CM)等。
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6.4.2 单克隆抗体技术过程 5、融合细胞的筛选和克隆 ①融合细胞的筛选 筛选杂交瘤:第二抗体法、抗原结合法、功能筛选
单克隆抗体技术过程 5、融合细胞的筛选和克隆 ①融合细胞的筛选 筛选杂交瘤:第二抗体法、抗原结合法、功能筛选 法。筛选能产生目的抗体的杂交瘤。 ②融合细胞的克隆:有限稀释法、软琼脂法 ③杂交瘤细胞及其单抗的鉴定: 染色体鉴定;特性鉴定;类别鉴定;单克隆抗体纯 度鉴定。
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6.4.3 单克隆抗体的大量制备 1. 体外培养 满足实验室需要时,将对数生长期的杂交瘤细胞悬
单克隆抗体的大量制备 1. 体外培养 满足实验室需要时,将对数生长期的杂交瘤细胞悬 浮培养4~5天,离心收集上清夜,分装冻存备用。 生物医学领域应用的单克隆抗体须达一定纯度。培 养液中的血清干扰抗体的活性,也影响分离纯化,增 加生产成本。用无血清培养基培养杂交瘤和制备单克 隆抗体,使抗体易于纯化,且能避免可能来自血清的 污染。 适用的无血清培养基:基础培养液加添加成分,如 IMDM、Han’s F12。
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6.4.3 单克隆抗体的大量制备 2. 体内培养制备单克隆抗体 从腹水中制备单克隆抗体也是实验室常用方法之
单克隆抗体的大量制备 2. 体内培养制备单克隆抗体 从腹水中制备单克隆抗体也是实验室常用方法之 一。在动物体内制备单抗,可在短时间内获得足够 量的单抗供实验使用,但要消耗大量活的小鼠而不 适合规模生产。另动物本身 的抗体给单抗的纯化 带来困难。 注射异十八烷基和不完全弗氏佐剂抑制小鼠免疫 功能。将杂交瘤接种于小鼠腹腔,诱导产生腹水, 分泌单抗。每只小鼠可获1~10ml腹水,常常5~6ml 腹水。单抗1~25μg ∕ ml。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 鼠源性单抗在生命科学和医学临床方面应用前景很 广。但鼠源性单抗带有鼠抗原决定簇,其应用有一定的
人源性单克隆抗体制备及其发展 鼠源性单抗在生命科学和医学临床方面应用前景很 广。但鼠源性单抗带有鼠抗原决定簇,其应用有一定的 局限性:注入人体内引起抗鼠反应、抗体被清除、产生 过敏反应、不能有效激发机体的免疫防御系统。因此, 低免疫原性、高效性、人源性单抗是必须的。 1984年开始改造鼠源性单抗,使其人源化,1989年进 入了新阶段。但进展慢:缺乏融合率高、性状稳定的亲 本细胞,不能用任意抗原免疫人体获得足够的抗原特异 性B细胞。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 人们致力于:培养筛选人源性融合亲本细胞系、 EBV病毒转化人B细胞、人源性轻链和重链可变区基
人源性单克隆抗体制备及其发展 人们致力于:培养筛选人源性融合亲本细胞系、 EBV病毒转化人B细胞、人源性轻链和重链可变区基 因转染细胞、噬菌体抗体库制备人单抗。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 一、EB病毒转化技术 1、EBV的特征
人源性单克隆抗体制备及其发展 一、EB病毒转化技术 1、EBV的特征 Epistein和Bar(1964年)从非洲Burkitt淋巴细胞瘤中 建立的类淋巴母细胞株中首先发现类似于包疹病毒的病 毒颗粒(viron)EBV。含双链DNA病毒,只感染灵长类 动物B淋巴细胞,将其转化获永生能力。静止B淋巴细 胞最敏感,随着B淋巴细胞向浆细胞成熟,感染力逐渐 下降。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 一、EB病毒转化技术 2. EVB制备 实验室常用B95-8细胞生产EVB。非洲绒猴外周单
人源性单克隆抗体制备及其发展 一、EB病毒转化技术 2. EVB制备 实验室常用B95-8细胞生产EVB。非洲绒猴外周单 核细胞感染野生型EVB(传染性单核细胞增多症患者 中分离),建系成为B95-8细胞株。 一般有10%~ 20%的感染细胞释放出完整的病毒颗 粒。 诱导剂:正丁酸、巴豆油、溴脱氧尿苷、碘脱氧尿 苷可激活细胞,感染、释放病毒的细胞增加到80%, EVB产量提高。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 一、EB病毒转化技术 3、转化 转化所用的B淋巴细胞来源:淋巴结、扁桃体、脐 带血、外周血。
人源性单克隆抗体制备及其发展 一、EB病毒转化技术 3、转化 转化所用的B淋巴细胞来源:淋巴结、扁桃体、脐 带血、外周血。 密度离心分离人单核细胞,加病毒液,细胞浓度为 107个细胞∕ml,温浴2~3h,弃上清液,培养1周左右 即可见到转化的淋巴细胞。 EBV转化的B细胞克隆的效力很低;抗体分泌能力 也不稳定;不分泌或分泌无关抗体的细胞很快增殖; 故应及时反复克隆阳性细胞。 加入饲养层细胞可促进B细胞生长。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 1、人-鼠杂交瘤单克隆抗体
人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 1、人-鼠杂交瘤单克隆抗体 人-鼠杂交瘤的制备方法基本与鼠-鼠杂交瘤相同。 亲本骨髓瘤细胞:小鼠骨髓瘤细胞(例如p3∕X63- Ag8.653、NS-1、SP2 ∕ 0)和大鼠骨髓瘤细胞(如Y3Ag 1.2.3)。 亲本B细胞:人外周血、淋巴结、脾细胞。 人-鼠杂交瘤分泌单克隆抗体很不稳定,会很快失去 分泌单抗的能力。原因可能是人染色体丢失。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 2、人-人杂交瘤单克隆抗体 人骨髓瘤细胞与人淋巴细胞融合。
人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 2、人-人杂交瘤单克隆抗体 人骨髓瘤细胞与人淋巴细胞融合。 研究结果表明:人-人杂交瘤核型稳定,但亲本细 胞系种类非常有限。人类只能从骨髓瘤患者中培养筛 选建立细胞株。许多科学家做了大量工作,目前也只 有三大类(骨髓瘤细胞系、B淋巴母细胞系、淋巴瘤 细胞)共三十多株细胞可用。淋巴瘤细胞融合率低、 抗体分泌少。现常用的是EBV转化的B细胞筛选的淋 巴母细胞系 。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 3、EBV转化-融合技术
人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 3、EBV转化-融合技术 EBV转化的不足:效率低、克隆困难、抗体分泌不 稳定、产量低。长处:转化后的B细胞有无限的分裂 能力。融合制备杂交瘤的不足:融合率和抗体产量不 高。故同时应用转化和融合技术,综合两种技术的优 点:转化了的分泌特异抗体的细胞在体外长期存活, 反复融合,直至出现分泌特异抗体的杂交瘤止;融合 频率高(10-5);抗体的特异性稳定;产量高。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 3、EBV转化-融合技术:例如,Kozbor等(1982):
人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 3、EBV转化-融合技术:例如,Kozbor等(1982): (1)转化人淋巴细胞B-6:分泌抗破伤风类毒素的抗 体,对乌本苷敏感。 (2)小鼠浆细胞瘤:p3∕X63-Ag8.653,不分泌抗 体,对HAT敏感。 (3)HAT培养基:含有乌本苷(ouabain)10-5 M。 (4)融合的杂交瘤细胞能长期存活,而未融合的死 亡。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 4、转基因动物制备单克隆抗体
人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 4、转基因动物制备单克隆抗体 人的抗体基因经改造后导入小鼠胚胎,得到的转基因小鼠免疫 后能产生人抗体。这种改造过的抗体绝大部分是人源性的,只有 构成抗原识别与抗原结合部位的轻、重链各三个互补决定区是鼠 源性的。 构建转人免疫球蛋白基因小鼠,制备人单抗,是解决人体内致 敏受限问题的一条新途径。转人免疫球蛋白基因动物:可用任何 抗原免疫而不受医学伦理学限制;可从血清中直接纯化人源性抗 体;可获得含人抗体基因的B淋巴细胞,制备基因工程抗体。具重 要的科研和商业价值,应用前景很广。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 5、严重免疫缺陷小鼠制备人单克隆抗体:
人源性单克隆抗体制备及其发展 二、细胞工程单克隆抗体技术 5、严重免疫缺陷小鼠制备人单克隆抗体: 严重免疫缺陷小鼠:severe combined immunodeficient mice (SCID mice),纯系小鼠16号染色体突变,破坏了免疫球蛋白基因和T细胞 受体基因重组,动物B、T淋巴细胞功能有障碍导致联合免疫缺陷。 SCID mice可接受人体组织或器官移植,产生人—鼠嵌合体小鼠 (Hu - SCID mice)。移植人免疫干细胞到SCIDmice体内,用任何 抗原免疫SCID mice,可从激活的淋巴细胞中富集抗原特异性B淋巴 细胞,进而细胞融合(或制备抗体库)。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 利用细胞工程制备人单抗发展缓慢,技术路线都不完
人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 利用细胞工程制备人单抗发展缓慢,技术路线都不完 善。其主要原因:适合于融合的亲本细胞系缺乏;不能 任意抗原免疫人体;不能随意从人体中分离淋巴细胞; 杂交瘤融合频率低;抗体分泌稳定性差等。 鼠源性抗体有其固有的局限性。 科学工作者结合分子生物学技术制备人源性单:人 – 鼠嵌合抗体、改型抗体、组合抗体库、噬菌体抗体库技 术、表位印迹选择技术等。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 1、人 –鼠嵌合抗体: 抗体Fc区的主要功能:激活机体免疫反应;产生人抗
人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 1、人 –鼠嵌合抗体: 抗体Fc区的主要功能:激活机体免疫反应;产生人抗 鼠反应。编码人抗体Fc 区的DNA片段代替鼠源性Fc段 DNA,生产人 –鼠嵌合抗体:人源性抗体的一部分(Fc 区)代替鼠源性抗体的一部分,保留其对抗原的特异 性,具有与补体和细胞结合的功能,减少异源性蛋白的 抗原性(人抗鼠反应)。 嵌合抗体由人稳定区和鼠可变区组成,虽大大降低了 人抗鼠免疫反应,但仍具一定的免疫原性。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 2、改型抗体: 也称CDR移植抗体。鼠源抗体中与抗原结合的三个
人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 2、改型抗体: 也称CDR移植抗体。鼠源抗体中与抗原结合的三个 互补决定区(CDR)基因置换人抗体中相应部分,所 得抗体只有CDR区来自小鼠,在人体内的免疫反应大 大降低。 但技术复杂,制备困难,进展很小。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 3、组合抗体库与噬菌体抗体库技术:
人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 3、组合抗体库与噬菌体抗体库技术: 省去了细胞融合,直接从表达的表型中筛选抗体基 因型。 B淋巴细胞(人、鼠)中分离mRNA逆转录成cDNA 经PCR扩增轻链和重链cDNA,用限制性内切酶酶切 cDNA,克隆到噬菌体载体中与噬菌体蛋白Ⅲ基因连成 融合基因,由辅助噬菌体感染E. coli, E. coli则携带有 表达载体,会释放噬菌体——外壳带有抗体片段,筛 选出(如免疫亲和层析法)特异性抗体。
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6.4.4 人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 4、表位印模选择技术: 上述筛选常常只能鉴别出高亲和力的抗体,亲和力
人源性单克隆抗体制备及其发展 三、人单抗制备技术的发展 4、表位印模选择技术: 上述筛选常常只能鉴别出高亲和力的抗体,亲和力 较低的抗体一般难以从未免疫的噬菌体抗体文库技术 中分离出来。 表位印模选择技术:用特定已知抗原从抗体组合文库(或噬菌体抗体文库)中筛选所需抗体,通过抗体可变区与抗原结合及编码轻、重链可变区鼠源性基因与人源性基因置换、匹配,获得人源性抗体。将筛选到的含人轻、重链基因的质粒转染到SP2∕O细胞中,产生人单克隆抗体。
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6.4.5 单克隆抗体的应用 目前,单克隆抗体已广泛应用于生命科学领域的各 个学科中。用于医学上诊断和治疗传染病、肿瘤以及
单克隆抗体的应用 目前,单克隆抗体已广泛应用于生命科学领域的各 个学科中。用于医学上诊断和治疗传染病、肿瘤以及 其他疾病;用于免疫学中的抗原的研究;用于生物蛋 白质大分子的分离和纯化。 已在农业、生物、制药、医疗等领域得到越来越 广泛的应用。
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6.4.5 单克隆抗体的应用 1、单克隆抗体在医学上的应用 (1)单克隆抗体靶向制剂:将纤溶酶原激活剂偶
单克隆抗体的应用 1、单克隆抗体在医学上的应用 (1)单克隆抗体靶向制剂:将纤溶酶原激活剂偶 联到抗纤维蛋白克隆抗体上,在实验动物模型体系 中,该分子复合物与血凝块结合,在血液中纤维蛋白 原尚未明显减少时就已将血凝块溶解了。该分子复合 物称为单克隆抗体靶向制剂。 (2)在肿瘤诊断与治疗中的应用:单克隆抗体用 于肿瘤定位显像诊断方面已取得良好的结果;在治疗 上的应用就远不如在诊断上所取得的成果。 (3)其他临床诊断及治疗:现已有商品的单抗试剂 盒出售,可对一些过敏源、癌症、性病、妊娠、妇女 月经排卵等进行早期诊断。
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6.4.5 单克隆抗体的应用 2.免疫学研究 单抗在免疫学上:可鉴定、区分各种抗原;可详 细检测大分子抗原上不同的抗原决定簇;鉴定各
单克隆抗体的应用 2.免疫学研究 单抗在免疫学上:可鉴定、区分各种抗原;可详 细检测大分子抗原上不同的抗原决定簇;鉴定各 种组织之间的相容性;寻找与肿瘤或其他细胞表 面抗原结合的优良试剂等。 3.大分子蛋白的提纯 利用免疫亲和层析柱提纯的干扰素IFN-α,在 其实浓度低于0.02%的情况下,回收率可达到 97%。
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