温度、pH、氧气、二氧化碳 泡沫 发酵染菌的防治与处理 发酵过程参数监测 第六章 生物工艺的控制 温度、pH、氧气、二氧化碳 泡沫 发酵染菌的防治与处理 发酵过程参数监测

发酵是一种很复杂的生产过程，其好坏涉及诸多因素，如菌种的生产性能、培养基的配比、原料质量、灭菌条件、种子质量、发酵条件和过程控制等。 不论是老或新品种，都必须经过发酵研究这一阶段，以考察其代谢规律、影响产物合成的因素，优化发酵工艺条件。 高产菌种对工艺条件的波动比低产菌种更敏感，故掌握生产菌种的代谢规律和发酵调控的基本知识对生产的稳定和提高具有重要的意义。

6.1 发酵过程的操作类型

6.1.1 分批发酵 是指在一个密闭系统内投入有限数量的营养物质后，接入少量的微生物菌种进行培养，使微生物生长繁殖，在特定的条件下只完成一个生长周期的微生物培养方法。 一次投料，一次接种，一次收获 间歇培养

分批发酵过程一般可粗分为四期，即适应（停滞）期、对数生长期、生长稳定期和死亡期；也可细分为六期：即停滞期、加速期、对数期、减速期、静止期和死亡期。

一、初级代谢的代谢变化： 初级代谢是生命细胞在生命活动过程中所进行的代谢活动，其产物为初级代谢产物。菌体的生长过程显示生长史的特征。 　一、初级代谢的代谢变化： 　　初级代谢是生命细胞在生命活动过程中所进行的代谢活动，其产物为初级代谢产物。菌体的生长过程显示生长史的特征。 　　但在发酵过程中，即使是同一种菌体，由于菌体的生理状态和培养条件的不同，各期的生长长短就有所不同。生产中要求在对数期接种原因就在此。

初级代谢没有明显的产物形成期，产物随着菌体生长在不断的进行合成，有的与菌体的生长呈平行关系。如乳酸、醋酸，与Ｑp顶峰几乎在同一时期出现，而氨基酸、酶、核酸的发酵过程比前者复杂，它的与Ｑp的大小则随培养基成分、碳源、温度、菌株等不同而变化。

二、次级代谢产物变化 　　次级代谢产物包括大多数的抗生素、生物碱和微生物毒素等物质。它们的发酵属于生长与产物非偶联的类型，一般分为菌体生长、产物合成和菌体自溶３个阶段。

菌体生长阶段： 接种后，菌体开始生长，直达到菌体的临界浓度。同时，营养物质进行分解代谢，不断的消耗，浓度明显减少，溶氧浓度逐渐降低到一定的水平，其中某一参数可能成为菌体生长的限制因素，使菌体生长速度减慢，积累了相当量的某些代谢中间体，原有的酶活力下降，出现了与次级代谢有关的酶，其酶解除了控制等原因，导致菌体的生理状况发生改变，菌体就从生长阶段转入产物合成阶段。 这一阶段又称为菌体的生长期或发酵前期。　　

　　 产物合成阶段： 产物数量逐渐增多，直至达到高峰，生产速率也达到最大，直至产物合成能力衰减。此阶段，营养物质不断被消耗，产物不断被合成。环境因素很重要，发酵条件应严格控制，方有利于产物合成。 　　营养物质过多，菌体就进行生长繁殖，抑制产物合成，使产物量降低；如果过少，菌体就衰老，产物合成能力就下降，产量减少。 这一阶段又称为产物分泌期或发酵中期。

菌体衰老，细胞开始自溶，氨氮含量增加，pＨ上升，产物合成能力衰退，生产速率下降，此时应必须结束发酵，否则，影响产品的提取。 菌体自溶阶段： 菌体衰老，细胞开始自溶，氨氮含量增加，pＨ上升，产物合成能力衰退，生产速率下降，此时应必须结束发酵，否则，影响产品的提取。　 这一阶段又称为菌体的自溶期或发酵后期。

分批发酵的优缺点： §操作简单、周期短 §染菌的机会减少 §生产过程、产品质量易掌握 §不适用于测定过程动力学 §对基质浓度敏感的产物，用分批发酵不合适

6.1.2 补料分批发酵 一种介于分批培养和连续培养之间的操作方式。 6.1.2 补料分批发酵 一种介于分批培养和连续培养之间的操作方式。 在进行分批培养的过程中，向反应器内加入培养基的一种或多种成分，以达到延长生产期和控制培养过程的目的。 没有输出或间歇放掉部分发酵液（半连续发酵）

补料分批发酵与传统分批发酵相比，其优点在于使发酵系统中维持很低的基质浓度。低基质浓度的优点： 1）可解除底物抑制，产物的反馈抑制和快速利用碳源的阻遏效应，并维持适当的菌体浓度，使不致于加剧供氧的矛盾； 2）可降低培养基的黏度，并尽可能地延长产物的形成时间。 3）避免培养基积累有毒代谢物。 与连续发酵相比，补料分批发酵不需要严格的无菌条件，也不会产生菌种老化和变异等问题。

半连续发酵的不足： 1）放掉发酵液的同时也丢失了未利用的养分和处于生产旺盛期的菌体； 2）定期补充和带放使发酵液稀释，送去提取的发酵液体积更大； 3）发酵液被稀释后可能产生更多的代谢有害物，最终限制发酵产物的合成； 4）一些经代谢产生的前体可能丢失； 5）有利于非产生菌突变株的生长

6.1.3 连续发酵 连续培养或连续发酵是指以一定的速度向培养系统内添加新鲜的培养基，同时以相同的速度流出培养液，使培养系统内培养液的液量维持恒定的微生物培养方式。

连续发酵的优缺点： 1）可提高设备利用率和单位时间的产量，节省发酵罐的非生产时间； 2）便于自动控制； 3）增加了染菌机会：长时间不断地向发酵系统供给无菌空气和培养基； 4）菌种发生变异的可能性较大。

6.2 发酵条件的影响及其控制 微生物发酵的生产水平取决于生产菌种的特性和发酵条件的控制。 6.2 发酵条件的影响及其控制 微生物发酵的生产水平取决于生产菌种的特性和发酵条件的控制。 了解发酵工艺条件对过程的影响和掌握反映菌的生理代谢和发酵过程变化的规律，可以帮助人们有效地控制微生物的生长和生产。

常规的发酵条件： 罐温、搅拌转速、搅拌功率、空气流量、罐压、液位、补料、加糖、油或前体，通氨速率以及补水等。 表征过程性质的状态参数： pH、溶氧（DO）、溶解CO2、氧化还原电位、尾气O2和CO2 含量、基质或产物浓度、代谢中间物或前体浓度、菌浓等。 间接状态参数： 比生长速率、摄氧率、释放速率（CER）、呼吸商（RQ）、基质消耗速率和产物合成速率等。

6.2.1 基质浓度对发酵的影响及其补料控制 基质是产生菌代谢的物质基础，既涉及菌体的生长繁殖，又涉及代谢产物的形成。

在分批发酵中，当基质过量时，菌体的生长速率与营养成分的浓度无关。 　 　 在分批发酵中，当基质过量时，菌体的生长速率与营养成分的浓度无关。 μ：菌体的生长比速Ks：半饱和常数 S：限制性基质浓度μmax: 最大比生长速度 在S ks的情况下，比生长速率与基质浓度呈线性关系。

在S >10ks时，比生长速率就接近最大值。 所以营养物质均存在一个上限浓度，在此浓度以内，菌体的比生长速率随浓度增加而增加，但超过此限，浓度继续增加，反而会引起生长速率下降，这种效应称基质的抑制作用。

在正常的情况下，可达到最大比生长速率，然而，由于代谢产物及其基质过浓，而导致抑制作用，出现比生长速率下降的趋势。 e.g. G100~150g/l，不出现抑制 G350~500g/l，多数微生物 不能生长， 细胞脱水。

就产物 的形成来说，培养基过于丰富，有时会使菌体生长过旺，黏度增大，传质差，菌体不得不花费较多的能量来维持其生存环境，即用 于非生产的能量大大增加，这对产物合成不利。

（1） 碳源的种类和浓度的影响和控制 碳源分为迅速利用的碳源和缓慢利用的碳源。迅速利用的碳源能较迅速地参与代谢、合成菌体和产生能量，并分解产物（如丙酮酸），有利于菌体的生长。但有的分解代谢产物对产物的合成可能产生阻遏作用。 　　 慢速利用的碳源为菌体缓慢利用，有利于延长代谢 产物的合成（如抗生素），许多药物发酵采用。例如乳糖、蔗糖、麦芽糖、玉米油分别是青霉素、头孢菌素C 、盐霉素、核黄素及生物碱发酵的最适碳源。因此选择最适碳源对提高代谢产物产量是很重要的。 在工业上，发酵培养基中常采用迅速和缓慢利用的混合碳源，来控制菌体的生长和产物的合成。

碳源的浓度也对发酵有影响。由于过于丰富所引起的菌体异常繁殖，对菌体的代谢和产物合成和氧的传递会产生不良影响。若产生阻遏作用的碳源用量过大，则产物的合成会受到明显的抑制。反之，仅仅供给维持量的碳源，菌体生长和产物的合成就都停止。所以控制合适的碳源浓度是非常重要的。 控制碳源的浓度，可采用经验法和动力学法，即在发酵过程中采用中间补科的方法来控制。这要根据不同代谢类型来确定补糖时间、补糖量和补糖方法。动力学方法是根根菌体的比生长速率、糖比消耗速率及产物的比生成速率等动力学参数来控制。

2）氮源的种类和浓度的影响和控制 氮源象碳源一样,也有迅速利用的氮源和缓慢利用的氮源。 迅速利用的氮源有：氨基态氮的氨基酸、硫酸铵、玉米浆。 慢速利用的氮源有：黄豆饼粉、花生饼粉、棉籽饼粉等蛋白质。

快速利用氮源容易被菌体所利用，促进菌体生长，但对某些代谢产物的合成，特别是某些抗生素的合成产生调节作用，影响产量。如链霉菌的竹桃霉素发酵中，采用促进菌体生长的铵盐，能刺激菌丝生长，但抗生素产量下降。 缓慢利用的氮源对延长次级代谢产物的分泌期，提高产物的产量是有好处的。但一次投入，也容易促进菌体生长和养分过早耗尽，以致菌体过早衰老而自溶，从而缩短产物的分泌期，因而要选择适当的氮源和适当的浓度。

发酵培养基一般是选用含有快速和慢速利用的混合氮源。如氨基酸发酵用铵盐和麸皮水解液、玉米浆；链霉素发酵采用硫酸铵和黄豆饼粉。但也有使用单一的铵盐或有机氮源(如黄豆饼粉)。它们被利用的情况与快速和慢速利用的碳源情况相同。 为了调节菌体生长和防止菌体衰老自溶，生产中也要控制氮源的浓度，除了在基础培养基中控制氮源浓度外，在发酵过程中，补加氮源来控制浓度。

（2） 磷酸盐浓度的影响和控制 磷是微生物生长繁殖所必需的成分，也是合成代谢产物所必需的。微生物生长良好所允许的磷酸盐浓度为0.32-300 mmol，但对次级代谢产物合成良好所允许的最高平均浓度仅为1.0 mmol，提高到10mmol，就明显影响其合成。

磷酸盐浓度在初级代谢中的要求不如次级代谢严格。 对抗生素来说，常常是采用生长亚适量（对菌体生长不是最适合但又不影响生长的量）磷酸盐浓度，其最适浓度取决于菌种特征、培养条件、培养基的组成和来源等因素。

6.2.2 灭菌情况 一般随灭菌温度的升高，时间的延长，对养分的破坏作用越大，从而影响产物的合成。 6.2.2 灭菌情况 一般随灭菌温度的升高，时间的延长，对养分的破坏作用越大，从而影响产物的合成。 如葡萄糖氧化酶发酵培养基的灭菌条件对产酶的影响： 灭菌蒸汽压力/(lb/in2) 10 15 时间/min 25 葡萄糖氧化酶酶活/(U/mL) 48.08 43.72 35.04 27.10

6.2.3 种子质量 §接种菌龄 一般，接种菌龄以对数生长期的后期，即培养液中菌浓接近高峰时所需的时间较为适宜。 6.2.3 种子质量 §接种菌龄 一般，接种菌龄以对数生长期的后期，即培养液中菌浓接近高峰时所需的时间较为适宜。 最适的接种菌龄要经多次试验，根据其最终发酵结果而定。 §接种量 接种量的大小是由发酵罐中菌的生长繁殖速度决定的。

§菌体浓度 菌体浓度简称菌浓（cell concentration）是指单位体积培养液中菌体的含量。菌浓的大小与菌体生长速率有很大的关系，菌体生长速率与微生物的种类及遗传特性有关，不同种类的微生物的生长速率是不一样的，细胞越复杂，分裂所需的时间越长。

菌浓的大小对发酵产物有很重要的影响。 在适当的比生长速率的条件下，发酵产物的产率与与菌浓成正比关系，即菌浓越大，产物的产量越大。但在好氧发酵中，菌浓太大，影响氧的传递，故在发酵中应控制适当的菌浓。

6.2.4 温度对发酵的影响和及其控制 微生物的生长和产物的合成都是在各种酶催化下进行的，温度是保证酶活性的重要条件，因此在发酵系统中必须保证稳定而合适的温度环境。

(1) 温度对微生物生长的影响 大多数微生物在20-40℃的温度范围内生长。嗜冷菌在温度低于20℃下生长速率最大，嗜中温菌在30-35℃左右生长，嗜热菌在50℃以上生长。

(2) 温度对发酵过程的影响 温度对青霉菌生长速率、呼吸强度和青霉素生产速率的影响如上图所示。可以看出，温度对参与生长繁殖、呼吸和青霉素形成的各种酶的影响是不同的。

活化能E反映温度变化对酶反应速率的影响 青霉菌： 生长 E=34 kJ/mol 呼吸 E=71 kJ/mol 青霉素形成速率对温度最为敏感，偏离最适温度引起的生产率下降比其他两个参数的变化更为严重。

(3) 温度对发酵液物理性质的影响 ＃影响氧在发酵液中的溶解度 温度 溶氧 ＃影响基质的分解速率 如菌体对硫酸盐吸收在25℃时最小

(4) 温度对生物合成方向的影响 金色链丝菌 研究发现，温度与微生物的调节机制关系密切。例如，在20℃时，氨基酸末端产物对其合成途径的第一个酶的反馈抑制作用，比在其正常生长温度37℃时更大。因此，考虑在抗生素发酵的后期降低温度，加强氨基酸的反馈抑制作用，使蛋白质和核酸的正常合成途径关闭得早些，从而使发酵代谢转向抗生素的合成。

（5）影响发酵温度的因素 发酵热 发酵热指的是发酵过程中释放出来的净热量，以J/(m3·h)为单位表示。

　 生物热：生产菌在生长繁殖过程中产生的热叫生物热。 营养基质被菌体分解产生大量的热能，部分用于合成高能化合物ATP，供给合成代谢所需要的能量，多余的热量则以热能的形式释放出来，形成生物热。 搅拌热：搅拌器转动引起的液体之间和液体与设备之间的摩擦所产生的热能。 Q搅拌  P

蒸发热 ：空气进入发酵罐与发酵液广泛接触后，进行热交换，必然引起水分的蒸发，被空气和蒸发水分带走的热量。 Q蒸发 =G（I出-I进） 　 辐射热：由于罐外壁和大气间的温度差异而使发酵液中的部分热能通过罐体向大气辐射的热量。 显热：废气因温度差异所带走的热量。 发酵热在整个发酵过程中是随时间变化的。所以，为使发酵在一定温度下进行，必须采取措施——在夹套或蛇管内通入冷水加以控制（小型的发酵罐，在冬季和发酵初期，散热量大于产热量则需用热水保温。）

（6） 最适温度的选择 所谓最适温度是指在该温度下最适于菌的生长或产物的合成。对不同的菌种、不同的培养条件、不同的酶反应以及不同的生长阶段，最适温度有所不同。

★在不同的发酵阶段选择不同的温度 最适生长温度与最适生产温度往往是不一致的。如乳酸发酵，乳链球菌最适生长温度是34C，而产酸最多的温度是30 C ，但发酵速度最高的温度达40 C 。青霉素产生菌的最适生长温度为30℃，但产生青霉素的最适温度是24.7℃。 发酵温度的确定，在理论上，整个发酵过程中不应只选一个培养温度，应根据发酵的不同时期，选择不同的培养温度。生长阶段，选最适生长温度，在产物分泌阶段，选最适生产生产温度。即变温控制。 e.g 青霉素变温发酵 起初5小时，维持在30 C ，以后降到25 C培养5小时，再降到到20 C培养28小时，最后又提高到25 C ，培养40小时，放罐。青霉素的产量比在25 C恒温发酵条件下提高14.7%。

★参考其它发酵条件 ★考虑培养基成分和浓度 例如，通气条件较差的情况下，可以适当降低温度，一方面增加溶解氧浓度，另一方面降低菌体的生长速率，以弥补因通气不足而造成的代谢异常。 ★考虑培养基成分和浓度 例如，在使用较稀薄或较易利用的培养基时，提高温度则养分往往过早耗竭，导致菌丝过早自溶，产量降低。

6.2.5 pH对发酵的影响和及其控制 发酵过程中培养液的pH值是微生物在一定环境条件下代谢活动的综合指标，是一项重要的发酵参数，它对菌体的生长和产品的积累有很大的影响。

（1） pH对发酵过程的影响 pH影响菌体的生长和产物的合成： （1）影响酶的活性，当pH值抑制菌体中某些酶的活性时，会阻碍菌体的新陈代谢； （3）细胞膜的电荷状态：引起膜渗透性的变化，从而影响菌对养分的吸收和代谢产物的分泌 （4）产物的稳定性 （5）对某些生物合成途径有显著影响： pH值往往引起菌体代谢过程的不同，使代谢产物的产量和比例发生改变。

微生物生长和生物合成的最适pH 微生物生长： 细菌（6.3~7.5), 霉菌和酵母菌（3~6), 放线菌（7~8)

　 e.g. Clostridium acetobutylicum fenmentation:　 pH在中性时，菌种生长良好，但产物产量很低，实际发酵合适的pH值４～６。 Streptomyces grisus fermentation 生产链霉素（ streptomycin）:菌体生长的合适pH 值为6.3~6.9，而合成链霉素的pH 值为6.7~7.3。因此，应根据发酵过程的不同阶段分别控制不同的pH 值。在生产过程中，及时进行调节和控制合适的pH值，以满足不同阶段的需要。

但同一产品的合适pH 值，还因菌种、培养基组成和培养条件有关。 在确定合适的pH 值时，还要考虑培养温度的影响，若温度不同合适的pH 值也可能发生变动。

几种抗生素发酵的最适pH范围 产品 菌生长最适pH范围 产物合成最适pH范围 青霉素 6.5~7.2 6.2~6.8 链霉素 6.3~6.9 6.7~7.3 四环素 6.1~6.6 5.9~6.3 土霉素 6.0~6.6 5.8~6.1 红霉素 6.6~7.0 6.8~7.3 灰黄霉素 6.4~7.0 6.2~6.5

（2） 发酵过程中pH的变化 发酵过程中，由于菌种在一定温度及通气条件下对培养基中碳、氮源等的利用，随着有机酸或氨基氮的积累，会使pH产生一定的变化。这种变化的根源是培养基的成分和微生物的代谢特性。

引起培养液的pH发生波动的因素 引起pH下降的因素： 1）培养基中碳、氮比例不当，碳源过多，特别是葡萄糖过量，或者中间补糖过多加之溶解氧不足，致使有机酸大量积累 2）消沫油加得过多 3）生理酸性物质的存在 引起pH上升的因素： 1）氮源过多 2）生理碱性物质存在 3）中间补料中氨水或尿素等的碱性物质加入过多

（3） 最适pH的选择和调节 选择最适pH的原则：既有利于菌体的生长繁殖，又要最大限度地使产物合成获得高的产量。

①第一种情况是菌体的比生长速率（μ）和产物比生产速率（Qp）的最适pH值都在一个相似的较宽的适宜范围内（a），这种发酵过程易于控制； ②第二种情况是μ（或Qp ）的最适pH值范围很窄，而Qp （或μ）的范围较宽（b）； ③第三种情况是μ和Qp对pH值都很敏感，它们的最适pH值又是相同的（c），第二和第三模式的发酵pH值应严格控制； ④第四种情况更复杂， μ和Qp有各自的最适 pH值(d),应分别严格控制各自的最适pH值，才能优化发酵过程。

合适的pＨ值是根据实验结果来确定。 　　将发酵培养基调节成不同的出发pH值，进行发酵，在发酵过程中，定时测定和调节pH，以分别维持出发pH 值，或者利用缓冲液配制培养基以维持之。到时观察菌体生长的情况，以菌体生长达到最高值的pH 值为菌体生长的最适pH 值。以同样的方法，可测得产物合成的合适PH值。

考虑发酵培养基的基础配方，使之有适当的比例，使发酵过程pH 的变化在适合的范围内。 因为培养基中含有代谢产酸[如葡萄糖产生酮酸、(NH4)2 SO4 ]和产碱 [如NaNO3 、尿素]的物质以及缓冲剂[如CaCO3 ]等成分，它们在发酵过程中要影响pH的变化，特别是CaCO3能与酮酸等反应，而起到缓冲作用，所以它的用量比较重要。在分批发酵中，常采用这种方法来控制pH的变化。

利用上述方法调节pH值的能力是有限的，如果达不到要求，可以用在发酵过程直接补加酸或碱和补枓的方式来控制，特别是补料的方式，效果比较明显。 过去是直接加入酸或碱来控制，但现在常用的是以生理酸性物质(硫酸铵)和碱性物质(氨水)来控制。它们不仅可以凋节pH值，还可以补充氮源。当发酵的pH值和氨氮含量都低时，补加氨水，就可以达到调节pH 和补充氨氮的目的。反之， pH值较高，氨氮含量又低时，就补加硫酸铵。

目前，已比较成功地采用补枓的方法来调节pH值，如氨基酸发酵采用流加尿素的方法，特别是次级代谢产物抗生素发酵，更常用此法。这种方法，既可以达到稳定pH值的目的，又可以不断补充营养物质，特别是能产生阻遏作用的物质。少量多次补加还可解除对产物合成的阻遏作用，提高产物产量。也就是说，采用补料的方法，可以同时实现补充营养、延长发酵周期、调节pH值和培养液的特性（如菌浓等）等几个目的。 最成功的例子就是青霉素的补枓工艺，利用控制葡萄糖的补加速率来控制pH值的变化范围（现已实现自动化），其青霉素产量比用恒定的加糖速率和加酸或碱来控制pH值的产量高25%。

6.2.6 溶氧对发酵的影响和及其控制 氧是一种难溶于水的气体。在25℃，1×105Pa条件下，纯氧在水中的溶解度为1.26mmol/L，空气中的氧在纯水中的溶解度更低（0.25mmol/L）。在28℃氧在在发酵液中的溶解度只有0.22 mmol/L，而发酵液中的大量微生物耗氧迅速（耗氧速率大于25~100 mmol/L.h），因此，供氧对于好氧微生物来说是非常重要的。在对数生长期，即使发酵液被空气饱和，若此时停止供氧，发酵液中溶氧可在几分钟之内便耗尽。 在好氧深层培养中，氧气的供应往往是发酵能否成功的重要限制因素之一。

　　好氧微生物的生长和代谢活动都需要消耗氧气，它们只有在氧分子存在的情况下才能完成生物氧化作用。 液体中的微生物只能利用溶解氧，气液界面处的微生物还能利用气相中的氧。 　 强化气液界面也将有利于供氧。 在微生物的培养过程中，应保持供氧与耗氧的平衡，满足微生物对氧的利用。

临界氧：不影响呼吸所允许的最低溶氧浓度，如对产物而言，便是不影响产物合成所允许的最低浓度。 （1）临界氧 发酵生产中用空气饱和度百分数来表示溶氧浓度。这只能在相似的条件下，在同样的温度、罐压、通气搅拌下进行比较。 这种方法能反映菌的生理代谢变化和对产物合成的影响。 临界氧：不影响呼吸所允许的最低溶氧浓度，如对产物而言，便是不影响产物合成所允许的最低浓度。

当不存在其他限制性基质时，溶解氧浓度高于临界值，细胞的比耗氧速率保持恒定； 　　如果溶解氧浓度低于临界值，细胞的比耗氧速率就会大大下降，或者是微生物的呼吸速率随溶解氧浓度降低而显著下降，细胞处于半厌气状态，代谢活动受到阻碍。　　

★ 呼吸临界氧值可用尾气O2含量变化和通气量测定，也可用溶氧电极测定。 各种微生物的临界氧值： 细菌和酵母：3~10% 放线菌：5~30% 霉菌：10~15% ★ 合成的临界氧值：考察不同溶氧浓度对生产的影响，便可求得合成的临界氧值。 注意： ●实际上，呼吸临界氧值不一定与产物合成临界氧值相同。 ●生物合成临界氧浓度并不等于其最适氧浓度。 ●在培养过程中并不是维持溶氧越高越好。过高的溶氧对生长可能不利。

（2）溶氧作为发酵异常的指标 生长过程从培养液中溶氧浓度的变化可以反映菌的生长生理状况。 发酵溶氧变化异常，可及时预告生产可能出现的问题。 ★操作故障或事故 ★中间补料是否得当 ★污染杂菌：溶氧会反常地迅速（一般2~5h)跌到零，并长时间不回升。这比无菌试验发现染菌要提前几个小时。但有时会出现染菌后溶氧反而升高的现象。

（3）溶氧的控制 微生物的“需氧” 可用耗氧速率或呼吸强度来表示： 　微生物的“需氧” 可用耗氧速率或呼吸强度来表示： 　 耗氧速率（oxygen uptake rate)：指单位体积的培养液在单位 时间的耗氧量。单位为 mmol O2/(L· h)，用　r表示 呼吸强度（respiratory strength)：单位质量的细胞干重在单 位时间的耗氧量。单位为 mmol O2/(g ·干细胞 ·h) ，用Ｑo2表示 　　两者的关系：　 需氧方面

式中，r——摄氧率，mmol O2/(L·h)； QO2——呼吸强度，mmol O2/(g菌·h)； X——菌浓，g/L。 若发酵液中溶氧保持不变，即供氧=需氧，则 使供需失去平衡的因子也会改变溶氧浓度。

在发酵工业中，耗氧对于菌体生长和产物生成之间的关系有三种类型： １．产物生成期的耗氧与菌体生长期的耗氧一致。 ２．产物生成期的耗氧超过菌体生长期的耗氧量。 ３．产物生成期的最适耗氧量低于菌体生长期的耗氧量。　　

影响需氧的工艺条件 项目 工艺条件 菌种特性 培养基的性能 好气程度 菌龄、数量 菌的聚集状态，絮状或小球状 基础培养基组成、配比 物理性质；粘度、表面张力等 补料或加糖 温度 溶氧与尾气O2及CO2水平 消泡剂或油 表面活性剂 配方、方式、次数和时机 恒温或阶段变温控制 按生长或产物合成的临界值控制 种类、数量、次数和时机

　 在发酵过程中，影响耗氧的因素有以下几方面： 　１．培养基成分和补料 培养基的成分和浓度显著影响耗氧；培养液营养丰富，菌体生长快，耗氧量大；发酵浓度高，耗氧量大；发酵过程补料或补糖，微生物对氧的摄取量随着增大。

２．菌龄影响耗氧： 呼吸旺盛，耗氧力强，发酵后期菌体处于衰老状态，耗氧能力自然减弱。 ３．发酵条件影响耗氧： 在最适条件下发酵，耗氧量大。 　　 呼吸旺盛，耗氧力强，发酵后期菌体处于衰老状态，耗氧能力自然减弱。 　３．发酵条件影响耗氧： 　　 在最适条件下发酵，耗氧量大。 　发酵过程中，排除有毒代谢产物如二氧化碳、挥发性的有机酸和过量的氨，也有利于提高菌体的摄氧量。

（3）溶氧的控制 供氧方面 凡是使KLa和c*增加的因素都能使发酵供氧改善。 在稳定情况下，氧分子从气体主体扩散到液体主体的传递速率即氧的传质方程式为： 供氧方面 式中，dc/dt——单位时间内发酵液溶氧浓度的变化[mmol/(L·h)] KL——氧传质系数，m/h； a——比表面积（m2/m3) c*——氧在水中的饱和浓度，mmol/L； cL——发酵液中的溶氧浓度， mmol/L。 凡是使KLa和c*增加的因素都能使发酵供氧改善。

增加C*的办法： ★在通气中掺入纯氧，提高氧分压； ★提高罐压

提高KLa(提高设备的供氧能力）的办法： 与氧传质有关的工程参数 项目 设备条件 搅拌器 空气流量 类型；封闭或开放式 叶片形状；弯叶、平叶或箭叶 搅拌器直径/罐直径 挡板数和挡板宽度 搅拌器档数和位置 每分钟体积比[(V/V)/min] 空气分布器的类型和位置 搅拌转速 罐压 雷诺准数 “K”因子 功率准数 弗罗德准数 Pa

影响KL a的因素 1、搅拌： （1）增加气液接触面积（打碎气泡），增加氧传递面积。 （2）使液体形成涡流，从而延长气泡在液体中的停留时间。

（4）减少菌丝结团，降低细胞壁表面的液膜阻力。改善细胞对氧和营养物质的吸收，同时降低细胞周围的“废物”和“废气“的浓度，有利于微生物代谢。 2、空气的流速 KL a 随空气流速的增加而增大，但空气速度过大，则可使叶轮 发生过载，即叶轮不能分散空气，气体不经分散而沿搅拌器缓慢运动的中心迅速上升而逸出。

3、培养液的物理性质 发酵液的表面张力、粘度、离子浓度等都会影响气体的溶解度，还影响液体的湍动以及界面和液膜的阻力，因而影响传递效率。 发酵液中菌丝浓度增大，表观粘度增大，通气效率下降。 　 发酵过程中添加糖、花生饼粉等营养物质、前体或无菌水、消泡剂等均可改变培养液的理化性质。

　　4、 空气分布器对通气效率的影响 　　 发酵罐中装有多孔分布器和单孔分布器，在气流速度很低时，多孔分布器有较高的通气效率。但两者的区别随着气流速度的增加而逐渐减少。 　　 可能是低气流时多孔分布器可形成更大的传递面积，而当通气量增大时，单孔分布器能更大的增加发酵液的湍动程度。

控制溶氧的工艺手段 （1）改变通气速率（增大通风量）：增大KLa值。注意，过分增大通气速率会产生副作用，如泡沫生成、罐温增高等。 （2）改变搅拌速度：转速较低时，增大搅拌速度对提高溶氧浓度有明显作用；当转速很高时，再增大搅拌速度起不到调节作用，反而打碎菌丝体，使菌体自溶并减少产量。 （3）改变气体组成中的氧分压 （4）改变罐压：提高C*。不是十分有效 （5）改变发酵液的理化性质：如加消沫剂、补加无菌水、改变培养基的成分等 （6）加入传氧中间介质：一般是不溶于培养液的液体，呈乳化状态来提高气液相之间的传递。传氧中间介质有：血红蛋白、烃类碳氢化合物（煤油、石蜡等）、含氟碳化物。

各种溶氧控制方法的比较 方法 作用机理 投资 运转成本 效果 对生产作用 气体成分 C*变化 中到低 高 好 搅拌速度 KLa变化 低 挡板 通气速率 不定 温度 C*、氧需求变化 变化 基质浓度 氧需求变化 罐压 中到高 电解生产氧 小规模 传氧中间介质