Download presentation
Presentation is loading. Please wait.
1
几种水产动物血涂片的 制作及形态比较观察
2
一、实验目的 了解血涂片的制作方法, 同时认识鲫鱼和美国牛蛙的血细胞。
3
二、实验内容 鲫鱼和美国牛蛙血涂片的制作
6
三、实验材料 1. 鲫鱼,美国牛蛙 2. Giemsa 染料粉剂、瑞氏染料粉剂、 甘油、甲 醇 3. 磷酸二氢钾(无水)、磷酸氢二钠(无水) 4. 载玻片、 盖玻片、 注射器、玻璃棒、 pH 试纸、 烧杯、容量瓶
7
Giemsa 氏染料原液配制 Giemsa 染料粉剂 0.75g 甘油 50ml 甲醇 50ml 将粉剂放于甘油内搅匀,放入 60 度温箱 24h , 经常摇匀。取出待冷再加甲醇混匀,配成原液, 密封棕色瓶保存。使用时,以原液 5ml 加 M/15 磷酸盐缓冲液( pH6.4-6.8 ) 50ml 稀释成工作 液。
8
磷酸缓冲液的配置 分别称取磷酸二氢钾(无水) 6.64g ,磷酸氢二 钠(无水) 2.56g ,加少量水溶解,加水至 1000ml 。用精密 pH 试纸确定其 pH 。
9
载玻片的准备 新载玻片常带有游离碱质,须用浓度为 lmol/L 的 HCl 浸泡 24h ,再用清水彻底冲洗, 干燥后备用。旧载玻片要用含洗涤剂的清水中 煮沸 20min ,洗掉血膜,再用清水反复冲洗, 最后用 0.95mol/L 乙醇浸泡 1h ,干燥备用。使 用载玻片时,不要用手触及玻片表面,保持玻 片清洁、干燥、中性、无油腻。
10
四、实验步骤 1. 血涂片的制作 2. 染色 3. 观察
11
血涂片制作方法 取血液标本一滴置载玻片的一端,以边缘平滑 的推片一端,从血滴前沿方向接触血液,使血 液沿推片散开,推片与载玻片保持 30 ~ 45 度 夹角,平稳地向前推动,血液即在载玻片上形 成薄层血膜
13
涂片的厚薄与血滴大小、推片与载玻片之间的 角度、推片时的速度及血细胞比容有关。血滴 大、角度大、速度快则血膜越厚;反之则血膜 越薄。 一张良好的血涂片,要求厚薄适宜,头体尾明 显,细胞分布均匀,血膜边缘整齐并留有的空 隙。
14
血涂片的染色 血涂片染色包括两个过程:固定和染色。固定 是将细胞蛋白质和多糖等成分迅速交联凝固, 以保持细胞原有形态结构不发生变化。 常用的染色方法有瑞士染色法 (Wright) 、姬姆 萨染色法 (Giemsa) 等。
15
瑞氏染液 0.1g 瑞氏染料粉剂放入洁净干燥的研钵中,滴加 60ml 甲醇至全溶,密封于棕色小口瓶内,放置 半个月 -1 个月。
16
步 骤步 骤 血涂片经甲醇固定 2min 滴加工作液染色 15-30min ,室温。 蒸馏水漂洗 缓冲液分色,至血膜显示淡红色。 标本干燥后,封片活不封片 观察
17
结果 红细胞被染成橘红色,白细胞核紫色,嗜 酸性颗粒鲜红色,嗜碱性颗粒蓝紫色,中性颗 粒紫或紫红色,淋巴及单核细胞胞浆蓝灰色。
18
压片法 分别取鲫鱼和美国牛蛙的肝脏、肾脏、脾脏组 织,然后压片在载玻片上,晾干,然后染色。
19
染色注意事项 1 .载玻片必须非常洁净,中性,无油脂。不清 洁或非中性的载玻片会造成细胞特别是红细胞 形态发生改变,导致假性的异常形态红细胞出 现。非中性的载玻片还会影响染色环境的 pH 值,带油脂的载玻片会使细胞分布不均匀。
20
2. 染色过深、过浅的处理。染色过深、过浅与血涂片 中细胞数量、血膜厚度、染色时间、染液浓度、 pH 值密切相关。对于重要的标本可采用先试染的方法, 根据试染效果调节第二次染色方式。纠正染色过深可 缩短染色时间或稀释染液。纠正染色过浅可延长染色 时间。如果标本片有限出现了染色过深、过浅的情况, 可用如下办法挽救:染色过深可加少量缓冲液覆盖血 膜部分褪色,在显微镜下观察褪色情况及时终止。染 色过浅可重加染色液和缓冲液复染,也要在显微镜下 观察及时终止。
21
血液的组成 血液 血浆 血浆 血 C 血 C 红 C 白 C 血小板 水( 90% ) 其它
22
圆形细胞 人血涂片 (Giemsa 染色 ) ( 红色箭头示白细胞,兰色箭头示红细胞 )
23
白 C (leukocytes, white blood cell, WBC) WBC 有粒 C 无粒 C 中性粒 C 嗜酸性粒 C 嗜碱性粒 C 淋巴 C 单核 C 分类依据:根据 C 质内有无特殊颗 粒和颗粒的嗜色性。
24
中性粒 C 数量: 50-70 % ,是数量最多的白 C 。 数量: 50-70 % ,是数量最多的白 C 。 结构:分叶状( 2-5 个核)。 结构:分叶状( 2-5 个核)。 核左移: 1-2 叶核增多 - 细菌感染。 核右移: 4-5 叶核增多 -- 衰老。
25
中性粒 C Neutrophilic granulocyte
26
(2) 嗜酸性粒 C ( Eosinophils ) 数量: 0.5-3%. 数量: 0.5-3%. C 核: “ 八 ” 字形核. C 核: “ 八 ” 字形核. C 质:粗大嗜酸性颗粒 - 溶酶体. C 质:粗大嗜酸性颗粒 - 溶酶体. EM :颗粒中有长方形晶体. EM :颗粒中有长方形晶体.
27
嗜酸性粒 C( LM ) Eosinophilic granulocyte
28
(3) 嗜碱性粒 C 数量:最少, 0-1%. 数量:最少, 0-1%. C 核:不规则, 多呈 “S” 形. C 核:不规则, 多呈 “S” 形. C 质:蓝紫色颗粒, 大小不等, 分布不均. C 质:蓝紫色颗粒, 大小不等, 分布不均.
29
嗜碱性粒 CLM Basophilic granulocyte
30
(4) 淋巴 C ( Lymphocytes) 数量: 25-30%. 数量: 25-30%. C 核:大,圆形, 常有浅凹, 染色质浓密呈粗 块状. C 核:大,圆形, 常有浅凹, 染色质浓密呈粗 块状. C 质:少, 嗜碱性. C 质:少, 嗜碱性.
31
淋巴 C ( LM ) Lymphocyte
32
(5) 单核 C ( Monocytes) 数量: 3-8%. 数量: 3-8%. 大小:血液中最大的 C. 大小:血液中最大的 C. C 核:肾形, 马蹄形, 着色较浅. C 核:肾形, 马蹄形, 着色较浅. C 质:丰富, 弱嗜碱性, 灰兰色. C 质:丰富, 弱嗜碱性, 灰兰色.
33
单核 C Monocyte
34
血小板 Blood platelet
35
结 果结 果 红细胞橘红色,白细胞核紫色,嗜酸性粒细胞 鲜红色,嗜碱性粒细胞蓝紫色,中性颗粒紫或 紫红色,淋巴细胞及单核细胞细胞质蓝灰色, 血小板紫色。
36
蛙血液涂片
37
细胞形态和显微测量实验内容 细胞的显微测量需要以目镜测微 尺来进行,但其分度值随着放大倍 数的变化而变化,长度也不一样, 因此需要事先进行标定。而镜台测 微尺的长度是已知的,目镜测微尺 的标定是通过镜台测微尺来进行的。 细胞的显微测量
38
0.01mm 01234 012345678 目镜测微尺 ( 长度随放大倍数发生改变 ) 镜台测微尺 ( 每一大刻度值为 0.1mm ,小刻度值为 0.01mm) 目镜测微尺与镜台测微尺
39
放镜台测微尺于载物台 调节使镜台测微尺 与目镜测微尺平行 取下镜台测微尺 * 装入目镜测微尺 记录二者在重合线之间的刻度 计算标定值 目镜测微尺的标定
40
如在低倍镜下重合线之间目镜测微尺的长度为 50 格 镜台测微尺的长度为 68 格 则: 50:68=1:x x=1.36 格,即目镜测微尺的 1 小格相当于镜台测微尺 的 1.36 格,而镜台测微尺每 1 小格的长度为 10um ,则目镜测微 尺每 1 小格的长度为 13.6um 。 标定时 应注意 的问题 标定时必须严格按照操作规程,以免损坏测微尺; 重合线的判断应在二者刻度线完全重合; 比例式的计算; 标定值只能在同一放大倍数下进行测量。
41
如何进行蛙细胞的显微测量? 目镜测微尺 短轴长轴 转动目镜镜筒
42
细胞膜 细胞质 细胞核 蛙红细胞示意图
43
五、实验作业 一张好的血涂片的要求是什么 ? 绘制鲫鱼和牛蛙的血细胞。
Similar presentations