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分子克隆经验交流 071202
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准备好了吗? 你知道自己所做实验的前前后后吗? 准备好持久作战了吗? 有没有整理的习惯? 敢于大胆讨论? “没有失败就不会进步”
好奇与肯干并行 有没有整理的习惯? 自己的资源:文献、笔记、思路及实验系统(PCR体系、连接体系等) 公用的资源: 敢于大胆讨论?
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交流的范围:让目的基因在E.coli中表达
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第一部分:目的片段了解有多少
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目的片段? 文献:中文期刊网、万方、pubmed、http://scholar.google.com/schhp?hl=zh-CN 等
“关键词” 有所选择的看; 好的文献要在实验中不断的看,反复的看。 专利:中国专利局、patenthunter、
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对你的片段了解有多少? 影响因素: 工具: 核酸:GC含量、里面有什么样的酶切位点
蛋白:亲疏水性(膜蛋白很难表达)、大小(5~100KD)、Cys(二硫键) 工具: DNAStar软件包中:EditSeq可以分析GC含量,蛋白大小,Protean可以分析蛋白的亲疏水性。 Oligo可以查找内切酶位点。 在线预测一些信号肽预测等。
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引物设计(克隆引物) 考虑的因素:长度、Tm值、Loop值、要不要终止密码等; 设计之前一定要分析序列自身的酶切位点;
设计时考虑通用性——酶切位点的选择; 引物合成最好是分两管; 公司合成的引物可能会出错或没有分装! 有些时候可以将错就错 要不要突变引物 直接扩增获取小片段
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BamH I与Bgl II同尾酶 BamH I:GGATCC Bgl II :AGATCT T载体的正插与反插
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突变引物的设计 主要考虑引物3‘端加T(或A)
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PCR扩增 要有一个稳定的PCR系统(Buffer、dNTP、Taq等最好分装) 普通大小的片段用rTaq即可,但突变是完全可能的。
循环数不用太多。 扩增时最好加石蜡油。 PCR最怕污染了!!!! 突变PCR最好测一下序。
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连接T载及转化 如果有设计保护碱基此步可省; Takara体系效率很高; 转化:
Amp抗性失效问题:菌在平板上长久了会分泌酰胺酶降解Amp,产生卫星菌落。 酶切过程要分析T载上的酶切位点及片段自身酶切位点,分析正反插。 Buffer选择。 双酶切切载体时,最好先用一种酶切完后用另一种。
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第二部分:做进表达载体
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表达载体 非融合表达: 融合表达 其他载体(分泌表达、可溶性表达等) 辅助表达:CKS等
辅助构象折叠及二硫键形成:TRX、MBP、GST、NusA等 纯化:Pet、GST等 其他载体(分泌表达、可溶性表达等)
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整框和非整框; 标签:可多标签; 对现有载体进行改进:
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表达不出来,怎么了? 重新分析序列,是否有终止密码(非常用密码子)、设计不整框、引物出错等; 重新完成一遍,耐心的;
调节表达条件:改变温度、IPTG、抗性的量、培养基(Tryphone含有微量乳糖) 更换载体: 更换表达菌株: 换人做做,不行暂时放弃吧!
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表达菌株
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谢谢!!
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