第四章 肿瘤动物模型和抗肿瘤药物的研究方法

˙恶性肿瘤——常见病、多发病 ˙全世界每年700万死亡；占欧美死亡第二位 ˙我国城市居民第一位，农村第三位 ˙恶性肿瘤人类健康重要——杀手 进展较大, 疑难问题很多。 肿瘤动物模型和抗肿瘤研究方法具有重要意义。

肿瘤动物模型可分为三类： 自发性肿瘤动物模型 诱发性肿瘤动物模型 移植性肿瘤动物模型

第一节 自发性肿瘤动物模型 概念: 未经人为处理；自然发生 • 自发性乳腺癌模型 • 自发性白血病模型 第一节 自发性肿瘤动物模型 (animal model of spontaneous tumors) 概念: 未经人为处理；自然发生 • 自发性乳腺癌模型 • 自发性白血病模型

一、自发性乳腺癌模型 生长在体表,易早期发现,罕有自发消退,因而能准确观察其大小与生长速度,便于进行实验。

现介绍三种自发性乳腺癌小鼠模型 85%~100%。 C3H小鼠：繁殖用雌鼠自发性乳腺癌发生率为 A系小鼠： 经产雌鼠乳腺肿瘤发生率为30%~80%。 CBA小鼠：雌鼠自发性乳腺癌发生率为60%~65%。

在乳腺左右两侧及乳头部均可发生肿瘤。每只小鼠常见1个以上肿瘤。选择肿瘤数目和大小相近的动物, 配对分组,给予受试药,观察受试药对肿瘤发展的影响。 给药方案和给药途径可根据受试药物的特点确定。因自发性乳腺癌发展较缓慢，故采用间歇给药或小剂量连续给药较为合适。

[结果判定] 给药后每天观察肿瘤生长情况，记录发生时间和位置。 肿瘤结节长到一定程度,每周用脚规测量皮下肿瘤2次。测定肿块的最大径(a)和最小径(b)。 肿瘤体积(cm3) = ab2/2

将肿瘤体积变化对时间作出生长曲线,可由曲线的斜率变化判断药物抑制肿瘤生长的作用,尤其应观察肿瘤能否完全消退。

1.在同一品系内,发病率比较稳定,而不同品系间差别甚大。 2.动物乳腺癌发生与遗传基因、乳癌因子(即致乳癌病毒)及激素有关。 [注意事项] 1.在同一品系内,发病率比较稳定,而不同品系间差别甚大。 2.动物乳腺癌发生与遗传基因、乳癌因子(即致乳癌病毒)及激素有关。 3.饲料的变更有明显影响,要用固定全价营养饲料。 4.配对分组。

二、AKR白血病模型 AKR小鼠为白血病高发品系，淋巴细胞白血病发病率雄性76%~90%，雌性为68%~90%。 [操作步骤] 实验用6~12月龄AKR小鼠, 此时鼠的脾和淋巴结肿大, 血象异常。 经血液检查确诊为白血病后的次日, 配对分组并开始给予受试药, 观察结果。

[结果判定] 观察指标：末梢血象,白细胞数,淋巴结和脾大小,动物生存时间。有效者生存期比对照组延长, 并根据血象评价药物的诱导缓解和维持缓解作用。 [注意事项] 各鼠白血病的病程不一,自发瘤确诊后, 实验时应配对分组。

[自发性肿瘤的总体评价] 动物自发性肿瘤的病因往往是由动物的遗传特性决定的,与人癌的病因有较大距离。 各动物肿瘤生长速度差异较大, 很难在限定时间内获得大量生长均匀的荷瘤动物(tumor-bearing animals) 因此，自发性肿瘤动物模型很少在抗肿瘤药物的常规筛选中广泛应用。

第二节 诱发性肿瘤动物模型 概念: 在实验条件下; 使用致癌物(carcinogens); 诱发动物发生肿瘤 第二节 诱发性肿瘤动物模型 (animal models of induced tumor) 概念: 在实验条件下; 使用致癌物(carcinogens); 诱发动物发生肿瘤

[基本原理] 利用外源性致癌物引起细胞遗传特性改变，从而出现异常生长和高增殖活性细胞,形成肿瘤。 外源性致癌物主要有化学性、物理性(如放射性物质)及生物性(如诱发动物肿瘤的病毒),其中以化学性致癌物最为常用。

一、诱发性肿瘤动物模型的基本方法 实验时,必需注意选择合适的致癌方法、动物种系、致癌物及其溶剂、给予剂量、途径以及观察时间等。致癌物的剂量应能保证动物的存活率较高、诱发期较短和诱发肿瘤频率较高。

常用的致癌物给予方法和途径 1.涂抹法: 涂抹在背部及耳部皮肤,主要用于诱发皮肤肿瘤。 2.经口给药法：通过饮水、饲料或灌喂动物。常用于食道癌、胃癌及大肠癌等。 3.注射法：致癌物制成溶液,经皮下、肌内、静脉或体腔等途径注入体内,本法较常用。

常用的致癌物给予方法和途径 4.气管注入法：常用于诱发肺癌。 5.穿线法：将致癌物置于无菌试管内,加热使之液化,吸附于预制的线结上,再将此线结穿入靶组织而诱发肿瘤。 6.埋藏法：包埋于皮下或其他组织内。

二、诱发性肿瘤模型的动物和致癌物 动物：大鼠，小鼠，犬等 致癌物： 多环碳氢类 亚硝胺类 偶氮类 黄曲霉毒素 （饲料中含0.001~0.015ppm黄曲霉毒素B1, 喂养6个月,诱发大鼠肝癌）。 ppm = parts per million

[诱发性肿瘤模型的总体评价] 约80%人癌是由环境因素引起的, 诱发性肿瘤的病因与人癌的情况近似, 且均经过较长演变过程而成瘤。动物诱发性肿瘤是比较类似于人类肿瘤的动物模型。 然而,人癌的发生原因十分复杂,往往并非由已知的动物致癌物所引起。另外,动物诱发性肿瘤的组织病理类型、发生发展过程也不一定与人癌完全一致。

本模型的最大困难是诱癌时间长、成癌率常达不到100%, 而且动物之间肿瘤发生时间、发展速度的个体差异很大, 难以将未治疗的动物作为治疗动物的对照。

(Animal model of transplanting tumors) 第三节 移植性肿瘤动物模型 (Animal model of transplanting tumors)

移植性肿瘤动物模型是指将动物或人体肿瘤移植到同种或异种动物体内连续传代而形成的肿瘤。 该实验法是抗肿瘤药物筛选最常用的体内方法，具有重要作用。目前临床上常用的抗肿瘤药大多是首先经该实验法而被发现的。

一般给予试验药7~10d, 在第8~11d可解剖动物获得结果。通过一些指标的观察, 可以判断试验药是否有具有抑制肿瘤生长的作用。这是任何体外试验所不能替代的, 其结果可为抗癌药物疗效提供重要依据。

它比前述的自发性和诱发性动物肿瘤更易实施。 现有移植性肿瘤接种成功率可达100%, 可在同一时间内获得大量(数十至百余只动物)、生长相当均匀的肿瘤。

一、动物的选择 移植性肿瘤常用的动物为小鼠、大鼠和地鼠。研究药物的抗肿瘤作用可选择三种或三种以上小鼠、大鼠的移植性肿瘤进行实验治疗；抗肿瘤药物筛选时，每批动物的来源应一致；

▲每批实验只用同一性别动物。 ▲小鼠体重18~22g，大鼠体重50~70g ▲每组至少10只动物，裸鼠可用5~10只。 根据瘤株的特点选用近交系、远交系或F1动物；雌雄性动物均可应用(乳腺癌等必须用雌性动物)。 ▲每批实验只用同一性别动物。 ▲小鼠体重18~22g，大鼠体重50~70g ▲每组至少10只动物，裸鼠可用5~10只。

二、肿瘤细胞的选择 复制移植性肿瘤模型需要使用肿瘤细胞株(瘤株，tumor strain)或细胞系(cell line)。 细胞株(cell strain)是指通过选择法或克隆法从原代培养物或细胞系中获得的具有特殊遗传、生化性质或特异标记的细胞群。

生长特征，包括接种成活率、生长速度、自动消退率、宿主寿命与宿主反应等。 瘤株的组织学类型和生长特征趋于稳定，并能在同系、同种或异种动物体内移植并连续传代。 生长特征，包括接种成活率、生长速度、自动消退率、宿主寿命与宿主反应等。 细胞系：原代培养物经首次传代成功后即为细胞系，由原先存在于原代培养物中的细胞世系所组成。

目前，动物移植性实验肿瘤（包括实体瘤、腹水瘤和白血病）约500种，还有大量人的瘤株或细胞系。常用的动物移植性肿瘤瘤株或细胞系有：

肉瘤S180腹水型或实体型 艾氏腹水癌或实体型 肝癌腹水型（HepA）或实体型（H22） 小鼠白血病L1210、P388及L615 小鼠黑色素瘤（B16） 小鼠Lewis肺癌 肉瘤S37 结肠癌C38、结肠癌C26 子宫颈癌（U14） 大鼠Walker癌肉瘤256（W256）

小鼠Lewis肺癌 小鼠黑色素瘤B16 小鼠白血病P388 筛选抗癌药物时，最好选用3类瘤株，即肉瘤、腹水型肿瘤和白血病株。在众多移植性肿瘤中，目前最受重视和应用最广的是： 小鼠Lewis肺癌 小鼠黑色素瘤B16 小鼠白血病P388 瘤株或细胞系的选择应尽量考虑与临床拟研究肿瘤的性质、部位等相近，如拟研究肝癌的治疗，可首选肝癌瘤株。

还必须指出，动物肿瘤的生物学特点与人类肿瘤有较大差别，对动物肿瘤生长有抑制作用的药物对人类肿瘤未必有效。 一种药物不一定对各种类型移植性肿瘤都有效，如果仅选一种瘤株进行药物筛选就可能出现漏筛。 还必须指出，动物肿瘤的生物学特点与人类肿瘤有较大差别，对动物肿瘤生长有抑制作用的药物对人类肿瘤未必有效。

三、接种方法 (一)一般要求 整个操作应在无菌条件下进行，可在无菌室和超净工作台内操作。动物处死后消毒皮肤，对每个实体瘤应分别使用灭菌的外科器械切取，对腹水瘤则应分别用灭菌的注射器抽吸。

常用接种部位： 实体瘤_____腋窝皮下 肌肉接种___大腿肌肉 腹水型肿瘤__腹腔 接种方法 瘤块污染常是接种失败的主要原因，应特别注意!!在高温季节操作时，可在盛有瘤源的器皿周围放置冰块直接降温。 常用接种部位： 实体瘤_____腋窝皮下 肌肉接种___大腿肌肉 腹水型肿瘤__腹腔

---> -------> ---> ---> (1)基本过程（以实体瘤为例） 冻存的瘤株 移入宿主体内 获得瘤块 (二)接种操作 1.实体瘤 (1)基本过程（以实体瘤为例） 7-10 d ---> -------> 冻存的瘤株 移入宿主体内 获得瘤块 （瘤源动物） (增殖) ---> ---> 制备瘤块 给动物接种 (受体动物)

(2)瘤块接种法：选取接种后7~10d生长状态良好的瘤源动物，颈椎脱臼处死，消毒操作部位皮肤。切开皮肤，剥离出瘤块，置于平皿上,平皿应放置在冰块上,内置少许灭菌的PBS或其他营养液,剔除非肿瘤组织和坏死组织，选取生长良好而无变性坏死、淡红色、鱼肉状的瘤组织，在无菌平皿内剪成2mm3的小块。 黑色素瘤则呈黑色或黑紫色 注意不用瘤中央的坏死部分

---> ---> ---> ---> ---> 流程图： 瘤源动物 颈椎脱臼处死 消毒切开皮肤 取瘤剪成 2mm3 小块 用套管针抽吸瘤块 接种于受体动物右前肢腋窝皮下 缩短接种操作时间,从瘤块取材到接种完毕一般应在30min内；平皿内放置少许灭菌PBS或其他营养液；接种部位皮肤应先消毒。

---> ---> ---> ---> ---> ---> (3)瘤细胞悬液接种法 如每次需要接种的动物数量较多时，可用瘤细胞悬液接种: ---> ---> ---> 取几个瘤块 除去坏死部分 混合瘤块 ---> ---> 剪成小块 匀浆器单向研匀 放入无菌容器 ---> 生理盐水稀释成1:3~1:4悬液 每只动物接种0.2ml；整个操作应在30min内完成；每次抽吸前应将细胞混匀。

(4)培养细胞接种法： 对数生长细胞→胰酶消化→PBS洗涤2次→计数活细胞数→用生理盐水稀释成细胞悬液→细胞悬液置于冰上→注射到接种部位(0.2ml,含1×106~1×107个细胞)。

选择接种后7~10 d 的健康动物 颈椎脱臼处死 腹部皮肤消毒 剪开剥去腹部皮肤 抽吸腹水 放入无菌容器内 2. 腹水型肿瘤 (1)抽取腹水： ---> 选择接种后7~10 d 的健康动物 颈椎脱臼处死 ---> ---> ---> 腹部皮肤消毒 剪开剥去腹部皮肤 ---> 抽吸腹水 放入无菌容器内 若用几只动物作为瘤源动物时,应将腹水混合.

另取小量腹水,置于加有肝素的干试管内,作为观察细胞形态及细胞计数用。 将空针中剩余的腹水制备推片,瑞氏染色,镜下进行细胞分类计数,其中瘤细胞数应≥95%。 抽出的腹水应为乳白色浓稠液体,若为黄色或含有大量红细胞时应弃去。

(2)细胞计数： 取肝素管内的瘤细胞,用生理盐水稀释10倍;取稀释液0. 9ml,加0. 2%台盼蓝生理盐水溶液0 (2)细胞计数： 取肝素管内的瘤细胞,用生理盐水稀释10倍;取稀释液0.9ml,加0.2%台盼蓝生理盐水溶液0.1ml混匀。用血细胞计数法计数瘤细胞总数和死细胞数。 瘤细胞死亡后，细胞膜通透性发生改变，细胞可被台盼蓝染成蓝色, 而活细胞不着色。

计数计数板四角大方格内的细胞数, 计数时对压边线的细胞,计左不计右,计上不计下。计数四个大方格内的细胞总数,然后按下列公式计算总细胞数和活细胞总数。 四大方格细胞总数－死细胞数 活细胞数/ml悬液＝ ×稀释倍数×10000 4

(3) 接种： 腹水用含葡萄糖的无菌Hanks液稀释至适当的浓度, 每只鼠腹腔注入0.1~0.2ml。整个操作应在60min内完成。

3. 白血病株的接种 腹水型白血病如L1210及P388的接种方法同腹水型肿瘤接种法。

四、肿瘤细胞的冻存与复苏 为了使肿瘤细胞能得以长期使用，防止退化或变异，保存不同代细胞的特征，对肿瘤细胞或瘤株进行冷冻保存是很必要的。一般在液氮中冻存1~2年，细胞存活率可达80%~90%。

1.冻存方法 取对数生长期增殖细胞，在冻存前一天最好换一次培养液。经胰蛋白酶消化、离心、洗涤，用含7份培养液、2份小牛血清、1份DMSO配成(1~5)×106个/ml的细胞悬液，转入细胞冻存管，贴上标签，注明细胞来源、名称及冻存日期。

①4℃--30min；－20℃--4h；－70℃--过夜--然后入液氮。 一般将冻存管: ①4℃--30min；－20℃--4h；－70℃--过夜--然后入液氮。 ②可将冻存管悬挂液氮罐口处过夜，之后浸入液氮中。 ③可用2cm厚脱脂棉将冻存管严密包裹,－20℃~－30℃过夜，然后除去脱脂棉直接放入液氮中。

2.冻存细胞的复苏方法 从液氮罐中取出冻存管，迅速放入38℃ ~ 40℃水浴中，并不停摇动使其在1min内全部融化，500~800r/min离心5min，弃上清，加入培养液，转入培养瓶内培养。次日更换培养液，以后按常规培养。

所冻存的细胞必须是对数生长期的细胞，细胞密度应在106个/ml以上。 细胞冻存及复苏的原则是“慢冻快融”，标准的冷冻速度是每分钟－1℃~－2℃，到－70℃以下时可迅速放入液氮中。 所冻存的细胞必须是对数生长期的细胞，细胞密度应在106个/ml以上。

第四节 人体肿瘤异种移植性肿瘤模型

异种移植性肿瘤是移植性肿瘤的一种，近年很重视人体肿瘤的动物体内移植模型。因为这种模型使用人的肿瘤细胞，在组织形态和遗传特征等方面，均与人类肿瘤相同，故用这种模型可以比较直接研究人类肿瘤的生物学特性及抗肿瘤药物。

由于异种移植的移植排斥反应常可导致移植失败，故选择适合的受体动物是移植成功的关键。常用的宿主动物主要有裸小鼠和C57BL/6小鼠，也可用免疫抑制剂或放射线等降低动物的免疫功能后，再进行移植。

人体肿瘤细胞的来源大致可分为两类，一类是人的肿瘤细胞株(系)；另一类是源于人体肿瘤组织块的癌细胞。 一、裸小鼠作为移植宿主 裸小鼠是在SPF屏障系统内繁殖生长的BALB/c裸小鼠，6~8周龄，体重21~22g。 [瘤源] 人体肿瘤细胞的来源大致可分为两类，一类是人的肿瘤细胞株(系)；另一类是源于人体肿瘤组织块的癌细胞。 常用人癌裸鼠移植的细胞株(系)、接种方式和最佳生长期见教材。

使用免疫功能受抑制的大鼠接种人癌细胞，可获得人癌动物模型。 先皮下注射阿糖胞苷，2d后用10Gy 60Co全身照射。 二、免疫功能抑制的大鼠作为移植宿主 由于裸鼠娇弱，饲养条件要求高，费用昂贵，故用裸鼠复制人体肿瘤异种移植肿瘤模型较难普遍应用。 使用免疫功能受抑制的大鼠接种人癌细胞，可获得人癌动物模型。 先皮下注射阿糖胞苷，2d后用10Gy 60Co全身照射。

第五节 抗肿瘤药物体内研究方法

基本步骤是: 低温保存瘤细胞—速融—加冷培养液洗除冻存液—用培养液将肿瘤细胞调至一定浓度—给特定动物 (宿主)注射 (ip或sc)。 肿瘤细胞在宿主动物体内增殖后—取出—给实验动物(受体动物)进行接种(荷瘤动物)。 不同肿瘤的宿主动物、取用肿瘤的时间及接种方法见表4-1。

一、实体瘤(√) [分组给药] 接种次日将动物随机分组： ☉实验对照组(C)：接种肿瘤细胞不给受试药，只给受试药相应的溶剂   [分组给药] 接种次日将动物随机分组： ☉实验对照组(C)：接种肿瘤细胞不给受试药，只给受试药相应的溶剂 ☉受试药组(T)：设高、中、低3个剂量 （给药1次或数次，给药途径应与推荐临床用药的途径相同，静脉给药者可用腹腔注射代替）。 ☉阳性对照药：对瘤株活性高的已知抗肿瘤药

＊对S180 , 艾氏腹水癌实体型 可用环磷酰胺20~ 30 mg /(kg .d) ＊对L615 可用5-氟尿嘧啶25mg /(kg.d) ＊对其他腹水型肿瘤一般用丝裂霉素 2mg / (kg.d) ＊对W256 可用丝裂霉素4mg/ (kg.d)+环磷酰胺20~ 30mg/(kg.d )

[疗效评价] 停药24h后处死动物,称体重,剥离瘤块, 称瘤重。受试药物对实体瘤的疗效以瘤重抑制率表示： C－T 瘤重抑制率 (%)= ×100% C 式中T:受试药物组平均瘤重; C:实验对照组 (模型组,荷瘤未用药动物) 平均瘤重。 (瘤重抑制率%=[(1－T/C)]×100%计算）

观察瘤重抑制率时，要求实验对照组小鼠瘤重均值不得低于1g（大鼠瘤重均值不得低于2g），否则表示肿瘤生长不良，实验作废。 给药组动物平均体重下降（给药前后自身比较）不得超过15%，动物死亡数不得超过20%，否则表示受试药有毒性反应，应减少剂量重新实验。

若中草药瘤重抑制率大于30%，合成药大于40%，且与实验对照组比较具有统计学意义，重复3次，疗效均稳定，则评定该受试药具有一定抗肿瘤作用。

实验中如果几个药给药组共用一个实验对照组时，后者的动物数应适当增加,公式为: C＝G×M。 [注意事项] 实验中如果几个药给药组共用一个实验对照组时，后者的动物数应适当增加,公式为: C＝G×M。 式中C=实验对照组动物数；G=同时试验的化合物数或同时试验的药物数；M=给药组的动物数。 如试验的药物数G为2，各给药组M均为10，故C＝2×10，实验对照组的动物数为20。

二、腹水型肿瘤(√)   [分组给药] 于接种后次日将动物随机分组并开始给药，受试药设高、中、低3个剂量组，口服或腹腔注射给药，连续给药5~10次。

如给药治疗期间实验对照组动物于7d内死亡率≥20%，表示肿瘤生长过快，实验失败。 [疗效评价] 接种后观察和记录动物死亡时间和生存天数。实验对照组动物通常在2~3周内全部死亡。如实验对照组中≥20%动物存活超过4周，表明肿瘤生长不良，实验作废。 如给药治疗期间实验对照组动物于7d内死亡率≥20%，表示肿瘤生长过快，实验失败。

腹水瘤以荷瘤动物的生命延长时间作为疗效指标，计算每组动物的平均存活时间，给药组与实验对照组的平均生存天数之比[(T/C)%]大于125%为有效。 在接种后60d分别记录给药组和实验对照组动物的平均生存时间(如果生存超过60d，按60d计算)，按下列公式计算生命延长率：

T －C 生命延长率( %)＝ ×100% C   式中:T为受试药物组平均生存天数； C为实验对照组平均生存天数。

若腹腔注射给药时生命延长率＞75%，非腹腔注射给药生命延长率＞50%，且与实验对照组比较具有统计学意义，重复3次，疗效稳定，则评定该受试药具有一定抗肿瘤作用。

1.关于几个给药组共用一个实验对照组时,实验对照组的动物数，同实体瘤。 [注意事项] 1.关于几个给药组共用一个实验对照组时,实验对照组的动物数，同实体瘤。 2.实验开始及结束时应分别称动物体重，若给药组动物体重明显低于实验对照组时(如超过15%)，判定疗效时应注意体重降低对肿瘤生长的影响，排除非特异的毒性作用。 3.腹水型肿瘤的研究方法,也适用于腹水型白血病，如L1210及P388。

三、移植性肿瘤研究方法的应用 (一)肉瘤S180模型（实体瘤）(√) 小鼠肉瘤S180(sarcoma180)是经典的动物肿瘤模型之一，在抗肿瘤药物体内筛选中被广泛应用。S180有实体型和腹水型两种生长形式，可以以一种形式传代，实体型与腹水型可互转。

[操作步骤] 1. 取接种在昆明小鼠约7~10d的S180肿瘤→剔除肿瘤包膜和坏死部分→置于玻璃匀浆器内→加入生理盐水配制成含瘤细胞为(1~2)×107/ml单细胞悬液→ 接种于同种异体小鼠腋窝皮下, 每只小鼠注射0.2ml(含瘤细胞2×106 ~4×106个)。

▲阳性对照药组 （环磷酰胺,接种次日1次性ip,100mg/kg） ▲受试药高剂量组 ▲受试药中剂量组 ▲受试药低剂量组 2.接种后第1d 称体重、随机分组并开始给药, 包括: ▲实验对照组 ▲阳性对照药组 （环磷酰胺,接种次日1次性ip,100mg/kg） ▲受试药高剂量组 ▲受试药中剂量组 ▲受试药低剂量组

腹腔注射或灌胃给药. 给药方案有多种。 至接种后第11~14d, 称量动物体重, 解剖肿瘤并称重。

S180实体瘤生长速度与接种量成正比，一般重2.5g的肿瘤需生长8~11d。根据各组动物瘤重按前述公式计算瘤重抑制率，并进行药物疗效评定。 [结果计算] S180实体瘤生长速度与接种量成正比，一般重2.5g的肿瘤需生长8~11d。根据各组动物瘤重按前述公式计算瘤重抑制率，并进行药物疗效评定。

1. 本方法也适用于B16、Hep、W256和C26等实体型移植性肿瘤模型。 [注意事项] 1. 本方法也适用于B16、Hep、W256和C26等实体型移植性肿瘤模型。 2. 实验结束时, 阳性对照组肿瘤基本不长或长得很小, 即阳性对照组的抑瘤率应大于80%以上, 而实验对照组动物在此期间瘤重应在2g左右。

4.腋窝部皮肤松弛，皮下接种后能允许肿瘤生长得较大，也可接种于腹股沟部皮下。 3.受试药组动物体重不低于原始体重的20%,否则表示受试药剂量过高, 需降低剂量重试。 4.腋窝部皮肤松弛，皮下接种后能允许肿瘤生长得较大，也可接种于腹股沟部皮下。

黑色素瘤

模型组 阳性药组 给药组

(二)大鼠W256癌肉瘤模型(×) 瓦克癌肉瘤256（Walker256，简称W256）的生长有实体型和腹水型两种形式，并可互转。接种在皮下或肌肉内成为实体瘤, 接种在腹腔则成为腹水瘤。在接种后开始给药治疗, 实验结束后比较对照组与试验组的瘤重或大鼠平均存活时间, 可判断受试药物的疗效。

[操作步骤] 1.取接种于大鼠大腿肌肉或腹腔第7d、接种于皮下11~13d的W256瘤, 配制成瘤细胞悬液 (约2×106 ~4×106个瘤细胞)。取体重55~65g Wistar大鼠, 雌雄不限, 每次实验均用同一性别。每鼠大腿肌内接种瘤细胞悬液0.2ml, 每组用6~10只动物。

2.接种后第1d称动物体重, 随机分组并开始给药,均用腹腔注射,每天1次, 连续7~10d,至第8~11d处死动物, 将双侧后肢从髋关节外剪下,分别称重,荷瘤肢体重减去对侧正常肢体重即为瘤重。

[结果计算] 按前述公式计算瘤重抑制率。 [注意事项] 1.本方法也适用于S180及艾氏腹水瘤等肿瘤。 2.接种的瘤源有两种；用腹水型瘤源, 传代6~8d 的瘤源(抽出的腹水为血性);用皮下接种的瘤, 用匀浆法制成瘤细胞悬液。

3.对照组肌肉型平均瘤重在3~5g; 皮下肿瘤平均瘤重为3~12g; 腹水型动物平均生存10~14d。

1951年Lewis在未经过处理的C57BL小鼠肺发现了未分化上皮样肿瘤，此后建立了实体型移植性肿瘤模型。

2.给每只成年C57BL/6小鼠腋窝皮下接种2×106个细胞（0.2ml/只）。 [操作步骤] 1.取C57BL/6小鼠皮下接种8~12d的Lewis肺癌作为瘤源，无菌条件下剥离瘤组织，用剪刀剪成小块，用套管针移植或用玻璃匀浆器加无菌生理盐水(1:3)研磨成匀浆，过400目丝网，成单细胞悬液，计数每毫升匀浆液中的瘤细胞数。 2.给每只成年C57BL/6小鼠腋窝皮下接种2×106个细胞（0.2ml/只）。

4.末次给药后24h处死动物，称体重，剥离腋窝下肿瘤并称重，计算瘤重生长抑制率。 3.接种后第1天进行动物分组并给药，阳性对照药用环磷酰胺50mg/kg体重(0.2ml/10g体重),隔日灌胃给药，共给3次。给药组每天灌胃给予受试药1次，实验对照组给予等体积生理盐水，连续10d。 4.末次给药后24h处死动物，称体重，剥离腋窝下肿瘤并称重，计算瘤重生长抑制率。

皮下移植Lewis肺癌的C57BL/6小鼠

Lewis肺癌移植瘤

[模型评价] Lewis肺癌恶性程度较高，受体鼠为C57BL/6小鼠，是目前国际应用较普遍的移植肿瘤模型之一，由于其接种部位的不同，用途比较广泛。本方法是评价药物体内抗肿瘤作用最常用的方法，对药物作用的预测性很好。

[注意事项] 1.实验开始和实验结束时应分别称量动物体重，如果给药组动物体重明显低于实验对照组（超过15%），判定药物疗效时应注意体重降低对肿瘤生长的影响，排除非特异的毒性作用。 2.肿瘤接种后2周，单个鼠瘤重应在500 mg以上，否则说明肿瘤生长不良，肿瘤接种失败。

3. 对某些效价较低的药物，如未纯化中草药有效成分或多糖类的筛选，可将瘤细胞接种于后肢爪垫皮下，接种细胞数为(2~4)×105/0 3.对某些效价较低的药物，如未纯化中草药有效成分或多糖类的筛选，可将瘤细胞接种于后肢爪垫皮下，接种细胞数为(2~4)×105/0.02ml（细胞数仅为常规皮下接种量的1/3），接种后给药治疗，10d后从踝关节处切除带瘤的足称重，计算瘤重抑制率。若切除带瘤的足后继续给药，还可观察受试药对肺转移的疗效。

(四)L1210白血病小鼠模型(×) L1210白血病最早是用甲基胆蒽在DBA/2小鼠诱发的，能在DBA/2小鼠及其杂交一代BDF1和CDF1小鼠体内生长。小鼠白血病L1210为腹水型肿瘤，是最常用的移植性肿瘤模型。 将1×105个腹水瘤细胞接种在DBA/2、BDF1或CDF1小鼠腹腔内，接种后24 h开始给药治疗，实验结束后比较给药组与实验对照组小鼠的平均存活时间，可判断药物的疗效。

[操作方法] 1.取接种于DBA/2小鼠约7d的L1210腹水，用生理盐水配成瘤细胞数为106个/ml的细胞悬液，接种于BDF1或CDF1小鼠腹腔内，每只小鼠接种0.1ml（含瘤细胞1×105个）。

2.实验当天接种动物，将瘤株进行细菌培养。接种后第1天检查培养情况，如无污染，将称量动物体重并随机分组后开始给药。接种后第2天再检查培养情况，如有污染，则实验报废。 动物分组包括实验对照组、受试药组及阳性对照药，均腹腔注射给药。给药方案有多种。第20天如果除阳性对照药组及受试药组外再无其他动物存活，则终止实验，评价结果。第30天处死全部动物，并评价受试药的疗效。

[结果] 小鼠接种L1210后平均存活8~11d。一般观察30d，根据各组动物的平均存活天数，按公式计算受试药对L1210白血病小鼠的生命延长率（未死亡动物按30d计）。

1.本方法也适用于P388、EAC、Hep、W256和S180等腹水型移植性肿瘤模型。 [注意事项] 1.本方法也适用于P388、EAC、Hep、W256和S180等腹水型移植性肿瘤模型。 2.如瘤株培养证明被污染，需重新接种动物。 3.接种后第5天给药组动物存活率应大于65%，否则说明药物剂量过大或药物有毒性。 4.如实验对照组动物在18d内仍未死亡，则认为肿瘤生长不良，接种失败，应分析原因重新实验。

(五)小鼠肾包膜下肿瘤移植模型(×) 在裸鼠、BDF1或CDF1小鼠的肾包膜（肾纤维膜）下移植人的瘤细胞，由于移植的瘤块仅1mm3，可由肾包膜下丰富的血管供给营养和氧，瘤块能迅速增长，短期内(6~11d)肿瘤生长较规则，接种成活率接近100%。

小鼠肾包膜下异种移植的肿瘤多选用人癌，其来源于裸鼠皮下接种传代16~22d的人癌瘤株、人癌培养细胞株或手术切除的新鲜癌组织。 [操作方法] 小鼠肾包膜下异种移植的肿瘤多选用人癌，其来源于裸鼠皮下接种传代16~22d的人癌瘤株、人癌培养细胞株或手术切除的新鲜癌组织。

1.在无菌操作下取小鼠或人体瘤组织，剪去包膜及出血坏死部分，切成约1mm3小块。选用体重18~22g裸鼠、BDF1或CDF1小鼠，麻醉后手术区消毒，打开腹腔暴露左肾，将1小块瘤组织装入套管针内，移植于肾外侧中线处的包膜下。

2.在装有显微尺的体视显微镜下，测量起始移植块的长径(a)和短径(b)，测量后关闭腹部切口。如在肾包膜下注射培养的瘤细胞株，则注射含1×107个细胞的悬液0.02 ml，不必测量移植瘤块的长短径。

3.接种次日分组、给药，每天给药1次，共5~10d。停药次日，即BDF1小鼠接种后6d或裸鼠接种后11d，称量体重，解剖带瘤肾脏，在体视显微镜下测量瘤块的长径(a)和短径(b)，按ab2/2公式计算瘤体积(V)。 4.肿瘤体积(V)也可以用下式计算：V＝(4/3)πabc＝(1/6)πABC，其中π为圆周率，ABC为肿瘤相互垂直的3个直径，abc为肿瘤相互垂直的3个半径。

[结果计算] 根据每只鼠的瘤体积计算给药组瘤体积的相当率，表示受试药对肿瘤生长的抑制作用。如给药治疗后瘤体积较原接种瘤体积减小，表示肿瘤消退，受试药治疗有效，以消退率表示：

给药组平均瘤体积 相当率（%）= ×100% 实验对照组平均瘤体积 给药后平均瘤体积 消退率（%）＝ ×100% 原接种平均瘤体积

1.手术切除的人体肿瘤需冰冻运送，从取出肿瘤到接种应在4 h内完成。 2.注意无菌操作，瘤源如有污染，应终止实验。 [注意事项] 1.手术切除的人体肿瘤需冰冻运送，从取出肿瘤到接种应在4 h内完成。 2.注意无菌操作，瘤源如有污染，应终止实验。 3.瘤块接种时应严格使每只鼠瘤块的长、短径控制在0.9~1.2mm。

5.若给药组动物体重下降至原体重的70%、实验终止时小鼠死亡率超过34%，表示受试药有毒性，应降低剂量重做实验。 4.应严格控制饲养条件和环境，以免影响动物体重增长而产生非特异性抑瘤作用。 5.若给药组动物体重下降至原体重的70%、实验终止时小鼠死亡率超过34%，表示受试药有毒性，应降低剂量重做实验。

以下接本章6~9节