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ELISA检测原理及方法 杭州赫贝,专业实验外包服务 联系人:李海龙13857120082

实验目的 实验原理 常用ELISA方法 实验材料 操作步骤

实验目的 酶联免疫吸附测定( 简称ELISA)是在免疫酶技术的基础上发展起来的一种新型的免疫测定技术,通过抗原(抗体)吸附在固相载体上,加待测抗体(抗原), 再加相应酶标记抗体(抗原),生成抗原(抗体)--待测抗体(抗原)--酶标记抗体的复合物,再与该酶的底物反应生成有色产物。借助分光光度计的光吸收计算抗体(抗原)的量。

实验原理 (1)抗原或抗体吸附于固相载体表面,并保持其免疫学活性; (2)抗原或抗体通过共价键与酶连接形成酶结合物,并且此种酶结合物仍能保持其 免疫学和酶学活性; (3)酶结合物与相应抗原或抗体结合后,可根据加入底物的颜色反应来判定是否有免疫反应的存在,并且颜色反应的深浅与待检样品中相应抗原或抗体的量成正比。

常用ELISA方法

实验材料 1.包被缓冲液(PH9.6 0.05M 碳酸盐缓冲液): NaCO3 1.59g NaHCO3 2.93g 加去离子水1L。 2.洗涤缓冲液(PH7.4 0.15M PBS): KH2PO4 0.2g NaHPO4.12H2O 2.9g NaCl 8.0g KCl 0.2g Tween-20 0.05% 0.5ml 3.稀释液(1%BSA): BSA 1g 加PBS100ml。 4.封闭液: 5%蔗糖和2%BSA或5%脱脂乳。 5. 96孔酶标板。 6.酶标仪。 7.显色液和终止液。

间接ELISA检测抗体操作步骤 1. 包被抗原:将定量好的抗原用包被液稀释到适当浓度,一般为1~10ul/孔,每孔加200ul,37℃ 温育1小时后,4℃冰箱放置16~18小时。 2. 洗涤:倒尽板孔中液体,加300ul洗涤液,静放三分钟,反复三次,最后将反应板倒 置在吸水纸上,使孔中洗涤液流尽。 3. 封闭:加5%蔗糖和2%BSA的封闭液200ul,37℃放置1小时。 4. 洗涤同2。 5. 加被检血清:用稀释液将被检血清作倍比稀释,在每个稀释梯度取100ul样品加入包被好抗原的酶标板空中,同时作空白对照和阴性对照,37℃放置2h。 6. 洗涤同2。 7. 加对应的辣根过氧化物酶标记的抗体, 每孔100ul, 放置37℃ 1小时。 8. 洗涤同2。 9. 显色:显色液100ul,室温暗处10--15分钟。 10. 加终止液:每孔50微升。 11. 观察结果:用酶联免疫检测仪记录450nm读数。

注意事项   1. 在试验过程中,应分别以阳性对照与阴性对照控制试验条件,待检样品应作重复,以保证实验结果的准确性。有时本底较高,说明有非特异性反应,可采用羊血清、兔血清或BSA等封闭。   2. 固相载体的选择:许多物质可作为固相载体,如聚氯乙烯、聚苯乙烯、聚丙酰胺和纤维素等。目前常用的是96孔聚苯乙烯凹孔板。不管何种载体,在使用前均可进行筛选:用等量抗原包被,在同一实验条件下进行反应,观察其显色反应是否均一性,据此判明其吸附性能是否良好。   3. 包被抗体(或抗原)的选择:将抗体(或抗原)吸附在固相载体表面时,要求纯度要高,吸附时一般要求PH在9.0~9.6之间。吸附温度,一般多采用4℃18~24小时。蛋白质包被的最适浓度需进行滴定:采用不同的蛋白质浓度进行包被后,在其它试验条件相同时,观察阳性标本的OD值。选择OD值最大而蛋白量最少的浓度。对于多数蛋白质来说通常为1~10μg/ml。   4. 酶标抗体工作浓度的选择:首先用直接ELISA法进行初步效价的滴定。然后再固定其它条件或采取“方阵法”在正式实验系统里准确地滴定其工作浓度。

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