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Studies on vibrio parahaemolyticus by PCR during the four seasons in the south coast of taiwan 指導老師:張福林副教授 研究生:陳念群.

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1 Studies on vibrio parahaemolyticus by PCR during the four seasons in the south coast of taiwan
指導老師:張福林副教授 研究生:陳念群

2 Introduction

3 致病三大弧菌 V.vulnificus V.cholerae V. parahaemolyticus
霍 亂 弧 菌 與 腸 炎 弧 菌 是 食 品 界 及 防 疫 單 位 最 重 視 的 食 品 中 毒 菌 (資料來源:行政院衛生署)

4 Thermostable direct hemolysin (TDH) cholera toxin ( CT ) 水(為主),食物及生活接觸
V. parahaemolyticus V.cholerae 1950年首次發現 1854年首次發現 H、O、K 01群(稻葉型霍亂弧菌及小川型霍亂弧菌)及 非01群(0-139 霍亂弧菌 ) Thermostable direct hemolysin (TDH) cholera toxin ( CT ) 水(為主),食物及生活接觸 2-48小時的潛伏期 24-48小時的潛伏期 會伴隨輕度發燒 病人通常不會發燒 呈水性且黏液狀、15%之患者含血便 有時有些黏液,不含血便,略帶甜味似洗米過後的水 不會有低血壓 低血壓 攝氏75度時,15分鐘以上 攝氏100度時,3分鐘 兩者在生化試驗上的區別:TCBS及嗜鹽性試驗

5 TCBS V. parahaemolyticus : 直徑1~2mm、有光澤、綠色 V. cholerae : 直徑2~4mm 、平滑、黃色、中心不透明、周圍透明 嗜鹽性試驗(0% 、 1% 、 6% 、 8% 、 10%) V. parahaemolyticus : 6% 、 8%生長良好 V. cholerae : 0% 、 1%生長良好

6 Vibrio parahaemolyticus is one of the most important food-borne pathogens in Taiwan, Japan and other coastal countries. Vibrio parahaemolyticus is a gram-negative, halophilic bacterium that occurs naturally in estuarine environments world-wide. (Environmental Microbiology 5(8), ,2003 )

7 致病因子 Thermostable direct hemolysin (TDH) TDH/
TDH-related haemolysin (TRH) Urease positive Lethal toxin 附著因子

8 Pathogenic V.parahaemolyticus generally produces a thermostable direct hemolysin (TDH).
More than 90% of clinical V.parahaemolyticus isolates, but fewer than 1% of food or environmental strains produce TDH. (APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Mar. 2003)

9 Aim 橫跨四季有系統地蒐集﹑保存與研究台灣南部海域中的腸炎弧菌,並且進行一些基本特性分析,進而由分析結果來評估腸炎弧菌在台灣南部海域的分佈情形,而最後再來加以更深入的探討。

10 研究架構 海水、有機樣本收集 (水質測量) 數據整理與分析 傳統方法培養 腸炎弧菌 利用腸炎弧菌ToxR基因專一性 利用PCR偵測樣本中
致病性腸炎弧菌(tdh/ trh)及分析KP和 血清型 傳統方法培養 腸炎弧菌 利用腸炎弧菌ToxR基因專一性 引子進行最確數-聚合酵素連鎖 反應(MPN-PCR),偵測樣本中全 部的腸炎弧菌密度 數據整理與分析

11 採樣地點 安平漁港 興達漁港 前鎮漁港

12 採樣方法 水樣:利用採樣筒丟入海水中採得水樣後放入無菌塑膠試管中 有機物質:刮取岸邊岩石上的藻類、貝類或水中魚類後放入無菌塑膠試管中
保存於室溫3小時內帶回實驗室分析

13 水質測量 PH (METTLER TOLEDO) 比重 鹽度 溫度 (VWR 1551-004) 透視度
濁度 (HACH ) 綜合水質DO、TDS、 EC (DR/2500 Prot HACH5900) COD (HACH COD Reactor) 、 (HACH ODYSSEY)

14 Sample collection (3水樣3有機樣本)
APW 每管APW各取1loop接種於TCBS 抽取DNA 挑選典型綠色菌落分別各接種於TSB-2及TSA-2 PCR(toxR) 由TSB-2 抽取DNA PCR (toxR) toxR(+): toxR(-): PCR (tdh) PCR (16S rRNA) toxR(+) PCR (trh) 致病性分析 生化鑑定 菌體抗原 PCR (tdh) KP試驗

15 toxR 對腸炎弧菌的專一性非常強 L-GTCTTCTGACGCAATCGTTG R-ATACGAGTGGTTGCTGTCATG
(JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY,Apr. 1999, p. 1173–1177)

16 TDH & TRH 通常致病性腸炎弧菌都會具有的致病因子 TDH: L-GGTACTAAATGGCTGACATC
R-CCACTACCACTCTCATATGC TRH: L-GGCTCAAAATGGTTAAGCG R-CATTTCCGCTCTCATATGC (Applied and Environmental Microbiology, Nov. 2004, P )

17 16S rRNA 所有的菌都具有16s rRNA ,於是選擇保守的序列來做為primer ,這樣就可知道樣本中的DNA是否有毀損.
L-ACGGCGCAGACTCCTACGGGAGGC R-GGGTTGCGCTCGTTGCGGCACTTA (Journal of Clinical Microbiology, Aug. 1994, P )

18 生化鑑定 試驗 正反應 負反應 腸炎弧菌的反應 斜面 黃色 紅色 - TSI 底部 + 產氣 斷裂 硫化氫 黑色 非黑色 MTM 混濁狀
澄清狀 革蘭氏染色 陽性 陰性 O/129敏感性 10μg 生長 不生長 150μg Oixdase 深紫色 非深紫色 ONPG 原色 Arginine 紫色 Lysine Halophilism 0%及10%Nacl 可生長 不生長或緩慢 6%及8%Nacl 42℃ 混濁 澄清 HLGB 歐普氏

19 KP 使用 Wagatsuma agar 加以培養,若有 β溶血 ( 在培養基上形成透明圈 ) 現象則稱為 Kanagawa phenomenon ( KP 陽性 ),很可能就是致病菌株 .

20 命 名 系 統 (一)方式: 西元年/月/地點/樣本編號/菌株編號 (二)說明: 西元年2005 →取後二碼 05
月份:01、02、03、04、05、06、07、08、09、10、11、12 地點:安平港→A 興達港→B 前鎮港→C 樣本編號 : 菌株編號:自01開始編號 例如 : 0508A1302

21 RESULTS

22 Table 1.安平港水質結果 水樣一 水樣二 水樣三 8 9 10 溫度 ( ℃) 31.56 29 30.1 30.29 31.86
濁度 (NTU) 9.07 2.79 4.45 8.45 2.82 4.04 2.74 2.77 比重 1.022 1.018 1.023 1.017 1.019 1.021 鹽度 (ppt) 35.61 29.02 29.42 34.79 28.07 31.58 30.37 33.46 透視度 (15cm) 28 19.2 15.6 25 14.2 13 23.1 22.4 22 PH ( ) 7.62 7.93 7.12 8.38 7.76 7.58 7.94 7.85 DO (>5.0mg/l) 16.33 5.02 4.98 10.06 5.73 5.94 7.49 4.93 4.31 TDS (56 ms / cm) 66.6 61.66 58.32 71.14 60.98 56.46 60.66 61.42 69.7 EC 48,000uS ~ 50,000uS(26℃) 2 49198 49252 56825 48285 47155 52597 48866 58613 COD (mg/l) 1650 1054 1430 1647 710 1563 1737 1036 1607

23 Table 2.興達港水質結果 水樣一 水樣二 水樣三 8 9 10 溫度 ( ℃) 28 30 31.1 30.8 28.5
濁度 (NTU) 20.6 2.92 5.72 6.81 2.81 2.29 1.7 1.17 1.84 比重 1.014 1.022 1.023 1.018 1.021 1.025 鹽度 (ppt) 23.26 34.79 36.55 28.62 33.04 36.13 39.23 透視度 (15cm) 17.2 25 26.8 23.3 23.8 21.2 27.2 26.6 10.8 PH ( ) 6.89 7.84 8.02 7.41 7.91 7.83 7.08 7.89 7.94 DO (>5.0mg/l) 6.36 6.02 6.15 7.22 6.28 5.12 6.49 5.28 5.24 TDS (56 ms / cm) 45.28 67.1 70.74 56.22 67.92 74.8 63.44 73.32 74.2 EC 48,000uS ~ 50,000uS(26℃) 35046 51086 59923 43238 51643 62429 48920 55932 61852 COD (mg/l) 1384 1455 1536 1590 1605 1598 over 1346 1678

24 Table 3.前鎮港水質結果 水樣一 水樣二 水樣三 8 9 10 溫度 ( ℃) 29 30.2 濁度 (NTU) 4.93 4.45
4.37 18.4 2.53 3.19 39.4 2.27 比重 1.022 1.024 1.025 1.021 1.023 鹽度 (ppt) 34.38 37.05 38.81 33.04 36.13 37.47 透視度 (15cm) 16 11 20.5 19.2 27.6 20.4 10.2 22 PH ( ) 8.27 8.11 8.18 8.14 8.23 8.16 8.17 DO (>5.0mg/l) 5.34 4.99 7.44 5.17 6.66 6.34 4.61 5.89 6.3 TDS (56 ms / cm) 72.8 73.54 73.66 72.48 73.92 72.92 72.86 73.7 71.58 EC 48,000uS ~ 50,000uS(26℃) 58467 56524 62761 58068 56673 61029 57814 56594 59572 COD (mg/l) over 1571 1168 1423

25 Fig 1. Amplification of the toxR gene by PCR
The primers amplified a 368bp fragment Lane1…….100bp marker Lane2…….CCRC 10806 Lane3…….negative control Lane4…….(+)sample Lane5…….(-)sample Lane6…….100bp marker 368bp

26 每稀釋檢液各接種3支(稱三階三支),並於35~37℃,培養16~18小時
原液 10倍 100倍 1000倍 10ml原液 90ml緩衝液 90ml緩衝液 90ml緩衝液 每稀釋檢液各接種3支(稱三階三支),並於35~37℃,培養16~18小時

27 Table 4.判定為腸炎弧菌陽性者,利用最確數表(如附表),推算出腸炎弧菌之最確數(MPN/g或MPN/ml )。
正反應試管數 MPN/ml (g) 95%信賴界限 0.10mL 0.01mL 0.001mL 下限 上限 <3.6 -- 9.5 2 21 4.5 42 1 3.0 0.15 9.6 28 8.7 94 11 35 6.1 1.2 18 3 29 6.2 36 9.4 3.6 38 23 4.6 0.17 110 7.2 1.3 64 17 180 43 9 7.4 20 75 200 120 37 420 160 40 15 93 16 150 9.2 1.4 210 430 14 290 90 1,000 240 3.7 460 2,000 1100 4,100 27 >1100

28 Table 5. Vibrio parabaemolyficus densities in different samples from three areas
Data Temp pH MPN (MPN/ml或g) MPN-PCR(toxR) (MPN/ml或g) 0508Awater < < 3.6 0508Awater 0508Awater < < 3.6 0508Aorganics > 1100 0508Aorganics > 1100 0508Aorganics > 1100 0508Bwater 0508Bwater < 0508Bwater 0508Borganics < > 1100 0508Borganics > 1100 0508Borganics > 1100 0508Cwater < 0508Cwater < < 3.6 0508Cwater < < 3.6 0508Corganics 0508Corganics < > 1100 0508Corganics <

29 Table 6. Vibrio parabaemolyficus densities in different samples from three areas
Data Temp pH MPN (MPN/ml或g) MPN-PCR(toxR) (MPN/ml或g) 0509Awater 0509Awater 0509Awater 0509Aorganics > 1100 0509Aorganics < > 1100 0509Aorganics < > 1100 0509Bwater 0509Bwater 0509Bwater > 1100 0509Borganics 0509Borganics 0509Borganics > 1100 0509Cwater < 0509Cwater < < 3.6 0509Cwater < < 3.6 0509Corganics < 0509Corganics 0509Corganics <

30 Table 7. Vibrio parabaemolyficus densities in different samples from three areas
Data Temp pH MPN (MPN/ml或g) MPN-PCR(toxR) (MPN/ml或g) 0510Awater 0510Awater >1100 0510Awater 0510Aorganics >1100 0510Aorganics < 0510Aorganics < >1100 0510Bwater 0510Bwater >1100 0510Bwater 0510Borganics >1100 0510Borganics 0510Borganics >1100 0510Cwater < <3.6 0510Cwater 0510Cwater < 0510Corganics < <3.6 0510Corganics < 0510Corganics <

31 V. parahaemolyticus detected by Sample (n) Culture method toxR-PCR
Table 8. Detection of Vibrio parahaemolyticus from water and organic samples V. parahaemolyticus detected by Sample (n) Culture method toxR-PCR Water (n= 27) (51.9) (74.1) Organics (n = 27) (66.7) (96.3) Total (n= 54) (59.3) (85.2)

32 Fig 2. Amplification of the 16S rRNA gene by PCR
763bp The primers amplified a 763bp fragment Lane1…..marker Lane2…..0508C32 Lane3…..0508C Lane4…..0508C34 Lane5…..0508C Lane6…..0508C36 Lane7…..0508C Lane8…..0508C47 Lane9…..0508C Lane10….. negative control Lane11…no sample Lane12…...no sample

33 Fig 3. tdh Fig 4. trh 251bp 250bp The primers amplified a 251bp fragment Lane1……marker Lane2……0508A41 Lane3…… 0508A Lane4……0508A43 Lane5……0508A Lane6……0508A45 Lane7……0508A Lane8……0508A47 Lane9……0508A Lane10….0508A49 Lane11……vp Lane12…negative control The primers amplified a 250bp fragment Lane1……marker Lane2……0508A41 Lane3…… 0508A Lane4……0508A43 Lane5……0508A Lane6……0508A45 Lane7……0508A Lane8……0508A47 Lane9……0508A Lane10….0508A49 Lane11……vp Lane12…negative control

34 Fig 5. Amplification of the tdh gene by PCR
The primers amplified a 251bp fragment Lane1…..marker Lane2…..0508B44 Lane3…..0508B45 Lane4…..0508B46 Lane5…..0508B47 Lane6…..0508B48 Lane7…..0508B49 Lane8…..0508B50 Lane9…..0508B51 Lane10…..0508B52 Lane11…..positive control Lane12…..negative control 300bp 200bp

35 Fig 6. Amplification of the trh gene by PCR
The primers amplified a 250bp fragment. Lane1…..marker Lane2…..0508B53 Lane3…..0508B54 Lane4…..0508B55 Lane5…..0508B56 Lane6…..0508B57 Lane7…..0508B58 Lane8…..0508B59 Lane9…..0508B60 Lane10…0508B61 Lane11…..positive control Lane12…..negative control 300bp 200bp

36 Sample (n) Culture method tdh-PCR Water (n= 27) 0 (0) 0 (0)
Table 9. Detection of haemolysin genes (tdh) from water and organic samples tdh detected by Sample (n) Culture method tdh-PCR Water (n= 27) (0) (0) Organics (n = 27) (0) (14.8) Total (n= 54) (0) (7.4)

37 Sample (n) Culture method trh-PCR Water (n= 27) 0 (0) 0 (0)
Table 10. Detection of haemolysin genes (trh) from water and organic samples trh detected by Sample (n) Culture method trh-PCR Water (n= 27) (0) (0) Organics (n = 27) (3.7) (27.8) Total (n= 54) (1.9) (13.9)

38 Table 11. Serotyping of the 101 strains isolated
血清型 數量

39 Fig 7. percentage of serotyping from three areas
% serotyping

40 Conclusion 研究中所發現的tdh(7.4)及trh(13.9)大多是藉由MPN-PCR所發現(MPN只發現1.9%trh).
在MPN與MPN-PCR兩者間比較的話,可以發現藉由MPN-PCR所偵測到的腸炎弧菌數是較多的. 在三個採樣點中可以發現,其中前鎮港所分離出的菌量都是很少量的,其次是安平港.

41 END Thank for your attention


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