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第三章 细胞工程基本技术
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实验室 无菌技术 显微技术 细胞冻存与复苏 细胞的分离、观察与分析
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一、实验室 1. 基本组成: 准备室 无菌间 操作间 培养室 分析室
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2.主要设备: 包括 水处理设备(纯水系统)、无菌设备(灭菌锅、超净工作台等)、培养设备(培养箱)、分离观察设备(离心机、显微镜)、保存设备(超低温冰箱、液氮罐等)
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二、无菌技术 在细胞培养过程中,操作环境、试验器皿、试剂等要经过灭菌处理,确保无污染。 包括:培养用品的清洗、灭菌
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培养用品的清洗:玻璃器皿、胶塞、塑料制品
灭菌: 细菌、真菌、支原体、病毒污染是细胞培养的最大危险。
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常用灭菌方法: 物理灭菌 化学灭菌:最常用70%乙醇;皮肤、台面等 抗生素灭菌:抑制细菌、真菌等污染。 紫外线灭菌:空气、操作台等;
湿热灭菌:培养液、玻璃器皿、手术器械等; 过滤除菌:含血清的培养液。 化学灭菌:最常用70%乙醇;皮肤、台面等 抗生素灭菌:抑制细菌、真菌等污染。
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污染检测与控制: 细菌:培养液颜色发黄,变混浊,显微镜下可见大量圆球状颗粒漂浮。
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真菌:常见有黑曲霉、酵母菌、烟曲霉等 培养液中漂浮着白色或浅黄色的小点,有的散在生长,培养液一般不发生混浊;倒置显微镜下可见丝状、管状或树枝状的菌丝纵横交错在细胞之间或培养基中,有的呈链状排列。抗真菌剂可预防(两性霉素B)。 丝状菌污染
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支原体污染:直径在0.2µm以下,难以通过过滤除去。(可采用地衣红染色或荧光染色进行判断)
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病毒:大小以纳米计,可以通过滤器。潜在病毒是细胞大量生产和疫苗、干扰素等生物制品制作中的难题。
交叉污染
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三、显微技术 常用光学显微镜、相差显微镜、倒置显微镜、荧光显微镜等
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四、细胞的冻存与复苏 细胞在传代过程中许多生物学性状容易发生改变,如细胞的粘附性、染色体数目等; 对有限增殖细胞系来说,传代次数是有限的; 过多的传代增加污染机会; 消耗大量人力物力。 细胞冻存与复苏
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冻存: 低温液氮冻存 :-196℃ 在细胞冻存过程中需要添加冷冻保护液。 常用低温保护剂: 甘油(10%)或 二甲基亚砜(7.5%—10%)
原则:慢冻 细胞内外环境中的水容易形成冰晶,一方面对细胞膜造成机械损伤,另一方面未结冰的细胞内的渗透压急剧升高,造成细胞脱水、pH值改变,蛋白质会发生变性等,最终使细胞死亡。
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复苏: 按照一定复温速度将细胞悬液由冻存状态恢复到常温。 原则:快融(1-2分钟内即恢复到常温)
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冻存过程: ①分装冻存小管; ②冻存小管放人普通冰箱冷藏层(4~8℃),40min; ③置于普通冰箱冷冻层(-10~-20℃),30~60min; ④ -30℃放置30min左右; ⑤在-70~-80℃下过夜; ⑥最后将冻存小管投入液氮保存。
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注意事项: 常温下DMSO对人体有毒,故在配制冷冻保护剂时最好带手套。 冻存管投入液氮时,动作要小心、轻巧,以避免液氮从液氮罐内溅出。 应注意控制冻存细胞的质量。 勿将冻存的细胞长时间放置在0~-60℃范围内。
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②从液氮中取出冻存小管,立即投入水浴锅中快速晃动,使其在1~2min完全融解;
复苏过程: ①将恒温水浴锅的温度调至37~40℃; ②从液氮中取出冻存小管,立即投入水浴锅中快速晃动,使其在1~2min完全融解; ③将细胞冻存悬液移入离心管,加入约5m1培养液,轻轻吹匀; ④将细胞悬液经离心5min。弃上清液; ⑤给细胞沉淀物加入完全培养液,轻轻吹吸均匀; ⑥将细胞悬液移入培养瓶内,加足培养液进行培养。
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五、细胞观察与分析 细胞计数:采用血细胞计数法,结果以每毫升细胞数来表示。可采用结晶紫染色 细胞活力:总细胞中活细胞所占的百分比。常用方法为台盼蓝染色法
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注意: 1,压线的细胞记上不记下、记左不记右 2,抱团的细胞记成一个 3,抱团的细胞超过10%需重新打散后再记
细胞密度(个/ml)=(4个大格细胞总数/4)×104(10的4次方) ×稀释倍数
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细胞固定:把组织和细胞的原有结构尽可能完整地保存下来。
使细胞的各部分易于着色,适于观察和长期保存。 不同固定剂对细胞的不同成分、结构固定效果不同。 选择合适的固定液是达到固定目的的基础。
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常用固定剂: 甲醇/醋酸:浓度为3:1,适用于观察染色体和Giemsa染色。 FAA固定液(40%福尔马林5ml+冰醋酸5ml+80%乙醇90ml):可用作固定植物的一般组织。 卡诺氏(乙醇60ml+氯仿30ml+冰醋酸10ml):适用于显示细胞化学成分。
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细胞染色: 苏木精-伊红染色:同时染细胞核与细胞质; Giemsa染色:将细胞核染成紫红色,细胞质染成粉红色; 福尔根染色:细胞核粉红至紫红色,细胞质无色; 考马斯亮蓝染色:显示细胞骨架; 荧光染色
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Giemsa染色 苏木精-伊红染色 福尔根染色
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考马斯亮蓝染色 荧光显微镜下的大肠杆菌
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总结
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